Multimodal effects of Saccharomyces boulardii CNCM I-745: a review

Cover Page


Cite item

Full Text

Abstract

The gut microbiome is a key regulator of health that is exposed to exposome (antibiotics, medications, and ecotoxicants, etc.). The gastrointestinal tract is the largest cellular consortium that ensures the well-being of the human body. Dysbiosis is an early marker of many diseases and is involved in their pathogenesis. The market for probiotics is growing, and by 2035, their share will reach 40% ($11.31 billion) in the structure of microbiota-oriented technologies. Understanding the molecular mechanisms of action of probiotics is crucial not only for ensuring the safety of therapy, but also for choosing the optimal strategy for their use in various clinical situations. Thus, the analysis and synthesis of current data on the molecular mechanisms of action of the probiotic strain Saccharomyces boulardii CNCM I-745 (Sb CNCM I-745) demonstrates multimodality – the result of complex and multilevel interaction with the human body, which are realized at several levels: luminal, trophic, and immune. Mechanisms include direct antimicrobial activity, barrier restoration, immune modulation, and systemic effects on the gut-liver axis (reduction of endotoxemia, protection of hepatocytes, etc.), the gut-brain axis (influence on serotonin metabolism, reduction of IBS symptoms, etc.), and metabolic control (change in the Firmicutes/Bacteroidetes ratio, increase in butyrate production, etc.). Modern medicine is based on the active implementation of various biotechnological developments in the prevention and treatment of infectious and non-infectious human diseases. The choice of probiotics should be based on proven molecular mechanisms, and Sb CNCM I-745 (the drug Enterol®) meets this criterion, offering a comprehensive, safe, and effective therapeutic tool. A broad evidence base, more than 30 meta-analyses based on over 130 studies conducted worldwide, served as the basis for the inclusion of Sb CNCM I-745 in a large number of guidelines and clinical recommendations in many countries, including the recommendations of the Ministry of Health of the Russian Federation.

Full Text

Введение

Биотехнологии стремительно развиваются, но технология опережает наше знание о сутевых механизмах жизни клеток и межклеточных взаимоотношениях. На сессии «Инновационные биотехнологии: от разработки до реализации», проходившей в рамках IV Форума будущих технологий «Биоэкономика для человека», В.И. Скворцова в своем докладе отметила, что в начале 2000-х годов, на волне первых успехов в расшифровке генома человека, научное сообщество охватила эйфория. Казалось, что биотехнологии скоро перевернут мир, однако этого не произошло. В настоящее время мы действительно достигли невероятных высот – владеем технологиями редактирования генома, управления экспрессией генов, эпигенетическими процессами. Тем не менее мы все еще не уверены в понимании всех молекулярных последствий этих изменений и далеки от понимания того, что делает клетку живой и как создать de novo живую клетку. Для стремительного технологического прорыва нам нужно создать баланс между скоростью технологического развития и глубиной фундаментального понимания биологических систем [1].

Крупнейшим клеточным консорциумом, обеспечивающим благополучие организма человека, является желудочно-кишечный тракт (ЖКТ). Микробиота – фактор сопряжения самых разных функций наших органов и систем в единую морфофункциональную структуру. Микробиом кишечника человека представляет собой сложную биологическую систему, функции и метаболические процессы которой являются результатом множественных взаимодействий между микробными группами. Внутри этих групп и между ними формируются специфические взаимосвязи, позволяющие дублировать и резервировать отдельные функции, системно управлять их реализацией и, в целом, обеспечивать надежное функционирование всего микробиома, в том числе в интересах макроорганизма.

Наши взгляды на нарушения функционирования приведенного полимикробного консорциума за более чем 100-летний период прошли несколько этапов: от представления о важности количественных изменений – мало «хороших» бактерий, много «плохих», таксономических – исчезновение или подавление облигатных представителей нормальной микробиоты и активации патобионтов – до понимания важности изменения метаболических процессов, собственно, микробиоты и затем микробно-тканевого комплекса ЖКТ, наконец, осознания важности разрушения регуляторных процессов. Клетки человека и микроорганизмов продолжают использовать эволюционно сложившиеся схемы энергообеспечения, питания, защиты и т.п. Основными факторами влияния на микробиоценозы человека были и остаются алиментарный и физиологический (неспецифические и специфические механизмы резистентности), а во взаимоотношениях между микроорганизмами – микробный антагонизм и синергизм. Характер взаимодействия макро- и микроорганизмов формировался в условиях отсутствия «факторов урбанизации».

Микробиота является мишенью для колоссального числа факторов экспосома, оказывающих на него ежеминутное многофакторное воздействие в течение всей жизни человека. В настоящее время мы выявляем их негативное воздействие не только на окружающую среду, но и на здоровье человека, а также на кишечную микробиоту [2]. Кишечный микробиом регулирует иммунитет, воспаление, метаболизм и т.д. Нарушение его функционирования под воздействием антибиотиков и неантибиотических препаратов, называемое микробиотоксичностью, может снизить эффективность лечения, а также способствовать развитию антимикробной резистентности [3].

Дальнейшие исследования взаимодействия лекарственных препаратов и микробиома в будущем могут помочь улучшить практику назначения лекарств и разработку препаратов, а также изменить наши взгляды на профилактику и лечение самых разных заболеваний человека, акцентируя внимание на микробиоценоз-сберегающих технологиях и подходах. Рынок микробиоценоз-ориентированных технологий стремительно развивается. По оценочным данным, к 2035 г. доля пробиотиков в его составе вырастет с нынешних 25% [4] до 40% общего объема рынка около 11,31 млрд дол. США [5].

Дисбиоз все чаще признается как фактор, способствующий широкому спектру клинических состояний, при этом диарея, особенно связанная с антибиотиками, представляет собой ранний клинический маркер нарушения микробиоты [6]. При хронических заболеваниях печени, в особенности сопровождающихся значительной степенью фиброза, прослеживается тесная взаимосвязь по так называемой оси «печень – кишечник» [7]. Избыточный бактериальный рост и нарушение состава микробиоты приводят к повышению проницаемости кишечного эпителия, развитию эндотоксинемии, активации провоспалительных цитокинов и, как следствие, дополнительному повреждению гепатоцитов [8, 9]. Формирующиеся метаболические нарушения, как индуцируемые самим вирусом гепатита С, так и опосредованные кишечной микробиотой, вносят дополнительный вклад в патогенез состояния [10].

Понимание молекулярных механизмов действия пробиотиков принципиально важно не только для обеспечения безопасности терапии, но и для выбора оптимальной стратегии их применения в самых разных клинических ситуациях [10–12].

Saccharomyces boulardii CNCM I-745 или Sb CNCM I-745 (лекарственный препарат Энтерол®) является высокоэффективным пробиотическим штаммом, обладающим широким спектром прямых эффектов, обеспечивающих мультимодальное воздействие на ключевые механизмы регуляции межмикробных взаимодействий, функционирование микробно-тканевого комплекса ЖКТ и ряда системных эффектов, которые могут быть использованы при широком спектре заболеваний человека.

Sb CNCM I-745– это первый и наиболее изученный представитель класса небактериальных пробиотиков, который «воспринимает» ЖКТ человека как «комфортную среду» [13]. Исходный штамм депонирован в Национальной коллекции культур микроорганизмов (CNCM) Института Пастера под номером CNCM I-745. Как непатогенные дрожжи, Sb CNCM I-745 отличаются от бактериальных пробиотиков большим размером, составом клеточной стенки, устойчивостью к антибиотикам и метаболическими свойствами [14, 15]. Метаболиты, продуцируемые Sb CNCM I-745, включают органические кислоты, аминокислоты, углеводы, нуклеозиды, фенилпропаноиды, поликетиды и другие биоактивные соединения. Кроме того, идентифицировано более 10 типов первичных и вторичных метаболитов или конечных продуктов метаболизма Sb CNCM I-745. Органические кислоты составляют 60% всех метаболитов, а гетероциклические соединения – 20,3%, за которыми следуют фенольные и нуклеозидные соединения [16].

В лиофилизированной форме Sb CNCM I-745 выдерживают воздействие желудочной кислоты и желчи, выживают при прохождении к целевому органу (чаще всего к толстой кишке), а после перорального приема их количество обычно достигает более 108 в 1 г стула [17]. При нарушении микробиоты под воздействием антибиотиков популяция Sb CNCM I-745 возрастает [18]. Некоторые виды клетчатки (псиллиум) увеличивают выживаемость и количество Sb CNCM I-745, тогда как другие виды клетчатки (пектин) не оказывают такого эффекта [19]. При пероральном приеме равновесная концентрация достигается в течение 3 дней, а после прекращения приема штамм выводится из организма в течение 3–5 дней [20].

Молекулярные механизмы мультимодального действия Sb CNCM I-745

Механизм действия Sb CNCM I-745 определяется несколькими аспектами:

  1. просветное (люминальное), включающее противомикробное, противотоксическое, препятствие адгезии и проникновению патогенов внутрь клетки, метаболическое (выработка активных веществ путем переработки волокон, короткоцепочечных жирных кислот – КЦЖК, и пр.), поддержание и восстановление здоровой микробиоты;
  2. трофическое (ферментативное), влияние на поддержание и восстановление функции энтероцитов, препятствие их разрушению и способность восстанавливать клетки кишечника, восстановление выработки ферментов;
  3. действие в слизистой оболочке кишечника (иммуномодулирующее, противовоспалительное), влияние на выработку цитокинов, С-реактивного белка (СРБ), иммуноглобулина (Ig)A.

Антимикробные эффекты связаны с прямым действием в отношении патогенной микрофлоры, обусловленным продукцией антимикробных молекул и связыванием патогенов, предотвращением их адгезии к клеткам-мишеням, конкуренцией за пищевые субстраты, прямым и опосредованным антитоксическим действием (рис. 1).

 

Рис. 1. Противомикробное и противотоксическое действие Sb CNCM I-745.

Fig. 1. Antimicrobial and antitoxic effects of Sb CNCM I-745.

 

Благодаря собственным размерам, превышающим размер бактериальной клетки, клетки Sb CNCM I-745 в преэпителиальном слое создают барьер, препятствующий взаимодействию патогенов, патобионтов и их токсинов с рецепторами эпителиоцитов [21]. Рецепторы на наружной мембране дрожжевой клетки способны связывать патогенные бактерии (Escherichia coli, Salmonella, Aeromonas hemolysin), тем самым «выключая» из патогенетического каскада инфекционного процесса на всех его этапах [21–23]. Sb CNCM I-745 способны изменять структуру бактериальной клетки-патогена, например Helicobacter pylori [26], снижать возможность поглощать эритроциты Entamoeba histolytica [39], нарушать прикрепление трофозоитов Giardia lamblia к эпителию [29], препятствовать внедрению в эпителиоциты патогенных E. coli [21], подавлять рост Bacillus cereus, Yersinia enterocolitica и Staphylococcus aureus, а также идентифицирована антимикотическая активность в отношении Aspergillus flavus, Aspergillus niger, Penicillium expansum, Fusarium oxysporum и Alternaria alternata [15].

Антибактериальная активность Sb CNCM I-745 обусловлена их метаболитами, такими как гликопротеины, белки, полиамины, сериновые протеазы, щелочные фосфомоноэстеразы, КЦЖК и др. [15]. Sb CNCM I-745 продуцирует каприновую кислоту, снижающую экспрессию генов HWP1, INO1 и CSH1 в клетках Candida albicans, угнетающую способность C. albicans образовывать гифы, адгезироваться к абиотическим поверхностям и эпителиальным клеткам кишечника, образовывать биопленки, а также снижающую эффлюксную активность транспортера множественной лекарственной устойчивости (MDR) Cdr1p, что повышает чувствительность патогена к флуконазолу [31, 32].

Важными компонентами специфической антагониcтической активности являются продукция протеаз, гидролаз и других белков, разрушающих токсины Clostridioides difficile [33], E. coli [34], Vibrio cholerae [35] и других бактерий, связывание некоторых бактериальных токсинов рецепторами-приманками на поверхности дрожжевой клетки [24] и афлатоксинов (АФМ1), продуцируемых A. flavus и Aspergillus parasiticus [25]. В отношении некоторых токсинов реализуются одновременно несколько механизмов. Так, Sb CNCM I-745 связывает протективный антиген (PA) Bacillus anthracis путем его адгезии к клеточной стенке и индукции его расщепления секретируемыми протеазами [40].

Недавно установленным механизмом антимикробной активности Sb CNCM I-745 является продукция уксусной кислоты на уровнях, обладающих антибактериальной активностью и препятствующих жизнедеятельности грам-отрицательных бактерий, например E. coli [30].

Широкая распространенность вирусных диарейных инфекций при отсутствии эффективных противовирусных препаратов диктует необходимость совершенствования патогенетической терапии с использованием, в том числе, пробиотиков с доказанной противовирусной активностью. Реальную клиническую эффективность при вирусных диареях продемонстрировали несколько пробиотических штаммов, одним из которых является Sb CNCM I-745. Он включен в обновленные рекомендации Европейского общества детской гастроэнтерологии, гепатологии и питания (ESPGHAN) по использованию пробиотиков для лечения желудочно-кишечных расстройств у детей, клинические рекомендации «Норовирусный гастроэнтерит у детей» (2024 г.) и «Ротавирусный гастроэнтерит у детей» (2025 г.), рекомендации Всемирной гастроэнтерологической организации (WGO) по пробиотикам и пребиотикам (2023 г.) в разделах острых гастроэнтеритов у детей и острой диареи у взрослых, а также в методические рекомендации Научного сообщества по содействию клиническому изучению микробиома человека и Российской гастроэнтерологической ассоциации по применению пробиотиков (2024 г.). Выраженный клинический эффект штамма Sb CNCM I-745 связывают с сочетанием иммуномодулирующих эффектов, включающих стимуляцию иммунной активности организма, выработку Ig, синтез противовоспалительных цитокинов и хемокинов, стимуляцию иммунного прайминга, подавлением окислительного стресса в инфицированных вирусом клетках и уменьшением секреции хлоридов, а также продукцией ряда биоактивных метаболитов, демонстрирующих антиоксидантные, антибактериальные, противоопухолевые, противовоспалительные и другие свойства [41].

Значительная часть эффектов Sb CNCM I-745 при инфекционных процессах обусловлена разобщением звеньев патогенеза, запускаемого грамположительными и грамотрицательными бактериями или вирусами на уровне внутриклеточных процессов. Доказана способность Sb CNCM I-745 модулировать сигнальные пути миноген-активируемой протеинкиназы [MAPK](ERK)/нуклеарного фактора каппа-би (NF-κB), FXR-NLRP3 (фарнезоидного Х рецептора-NOD-like receptor family pyrin domain containing 3), TLR4/TLR15-MyD8 (Toll-like receptor 4 / Toll-like receptor 15, myeloid differentiation primary response 88) и др., тем самым модулируя или модифицируя ответ различных клеток кишечного эпителиального барьера на внедрение патогенов или при воспалительных заболеваниях кишечника. Показано, что Sb CNCM I-745 вмешивается в несколько сигнальных путей, активируемых бактериальными токсинами и участвующих в клеточных реакциях на инфекцию: снижает секрецию воды, опосредованную как аденозинмонофосфатом циклическим (цАМФ), так и Ca2+-сигнальными путями регуляции секреции Cl- и препятствует реализации эффектов холерного и холероподобного токсинов [36, 37], уменьшает активацию митоген-активируемой протеинкиназы ERK1/2 и, следовательно, секрецию интерлейкина (ИЛ)-8, вызванную токсином A C. difficile [38], восстанавливает кишечный барьер после воздействия токсинов A и B C. difficile [33].

Усиление иммунного ответа слизистой оболочки и уровня секреторного IgA в кишечнике [34, 42] наряду с активацией фагоцитоза и бактерицидной способности макрофагов [43] позволяет в более ранние сроки и эффективнее реализовывать неспецифические механизмы защиты организма.

Способность модулировать активность клеток специфического иммунного ответа (Т-лимфоцитов) [44, 45] с усилением продукции антитоксических антител и обеспечивать адекватность механизмов неспецифической защиты, уменьшая гибель макрофагов [46] или привлекая их в инфекционный очаг посредством усиления продукции хемокинов (ИЛ-8, относящегося к CXC-хемокинам) [47], реализуется при инфекционном процессе, вызванном патогенами, а также при других состояниях, в которых принимают участие патобионты, в том числе при воспалительных заболеваниях кишечника, дивертикулярной болезни и др.

Двумя важнейшими компонентами патогенеза любого инфекционного или воспалительного процесса являются активация окислительных процессов и нарушение баланса противо- и провоспалительных регуляторных сигналов. Доказано, что Sb CNCM I-745 уменьшает окислительное повреждение толстой кишки за счет повышения уровней антиоксидантных ферментов (супероксиддисмутазы, каталазы и гемоксигеназы-1) и глутатиона, снижения накопления малонового диальдегида [48] и продукции тиоредоксина (Trx), снижающего активность как воспаления, так и окислительного стресса в кишечной стенке, усиливая защиту кишечного барьера и подавляя апоптоз [49]. Увеличение экспрессии генов, регулирующих продукцию цитокинов (ИЛ-10) и других противовоспалительных молекул [50], наряду со снижением активности продукции провоспалительных цитокинов и хемокинов (ИЛ-8, 6, 1β, фактора некроза опухоли α – ФНО-α, интерферона γ – ИФН-γ) [47, 51] обеспечивает реализацию противовоспалительных эффектов Sb при сохранении физиологического уровня реагирования на воспаление.

Неспецифическое иммуномодулирующее действие Sb CNCM I-745 проявляется в способности модулировать иммунный ответ, балансировать выделение про- и противовоспалительных цитокинов, поддерживать целостность кишечного барьера и баланса нормальной микробиоты кишечника. Данные эффекты реализуются на уровне местного иммунного ответа слизистой оболочки (например, кишечника или легких) и системного иммунного ответа (рис. 2).

 

Рис. 2. Противовоспалительное и иммуномодулирующее действие Sb CNCM I-745.

Fig. 2. Anti-inflammatory and immunomodulatory effects of Sb CNCM I-745.

 

В основе иммуноопосредованного действия лежат не только обусловленные, собственно, Sb CNCM I-745 эффекты, но и вторичные эффекты, обусловленные комплексным воздействием на микробиоту кишечника и весь микробно-тканевой комплекс ЖКТ.

Sb сложным образом регулируют баланс продукции про- и противовоспалительных цитокинов. Они способны, с одной стороны, усиливать ранний защитный ответ при инфекционных процессах за счет ранней выработки ИФН-γ и ИЛ-12 [57], с другой – увеличивать синтез цитокинов с противовоспалительным действием (ИЛ-10) и уменьшать продукцию «цитокинов воспаления» (ИЛ-8, 6, 1β, ФНО-α и ИФН-γ) [47, 48, 51]. Еще одна важная особенность Sb CNCM I-745 – способность взаимодействовать как с эпителиоцитами кишечного барьера, так и с клетками, непосредственно отвечающими за специфические и неспецифические иммунные механизмы. Sb CNCM I-745 стимулирует регуляторные Т-клетки, модулирует активность Т-клеток, вызванную дендритными клетками [57], и миграционное поведение Т-клеток, увеличивает захват Т-хелперных клеток в брыжеечные лимфатические узлы и влияет на адгезию лимфоцитов к эндотелиальным клеткам [44]. Подавление пролиферации Т-хелперов 17-го типа (Th17) и врожденных лимфоидных клеток 3-го типа (ILC3) играет важную роль при инфекции, вызванной E. coli и другими грамотрицательными микроорганизмами, C. albicans, а также при иммуноопосредованных заболеваниях. Значимая часть эффектов применения Sb CNCM I-745 обусловлена взаимодействием с макрофагами: снижение пироптоза макрофагов и усиление их фагоцитарной и бактерицидной способности [43, 46], активация комплемента, миграции моноцитов, гранулоцитов [56] и др.

Sb CNCM I-745 уменьшает окислительное повреждение толстой кишки за счет повышения уровней антиоксидантных ферментов (супероксиддисмутазы, каталазы и гемоксигеназы-1) и глутатиона и снижения накопления малонового диальдегида [48], при этом снижается продукция тиоредоксина (Trx), уменьшается активность воспаления и окислительного стресса в кишечной стенке, что усиливает защиту кишечного барьера и подавляет апоптоз [49]. При острых гастроэнтеритах у детей он оказывает комплексный эффект, достоверно снижая уровень СРБ к 7-м суткам терапии, повышая синтез IgA и количество CD8, нормализуя соотношение CD4 и CD8 [58].

Трофическое действие реализуется за счет поддержания и восстановления метаболических процессов в преэпителиальном пространстве, восстановления барьерной и защитной функций эпителия (рис. 3).

 

Рис. 3. Трофическое действие Sb CNCM I-745.

Fig. 3. Trophic effect of Sb CNCM I-745.

 

Метаболические эффекты Sb CNCM I-745 связаны с усилением высвобождения ферментов мембран щеточной каймы (лактазы, мальтазы, альфа-глюкозидазы, щелочной фосфатазы и α,α-трегалазы) и увеличением продукции дисахаридазы [66], КЦЖК, в частности бутирата и пропионата [67]. Кроме того, Sb CNCM I-745 способствуют повышению активности Na+-сопряженного всасывания D-глюкозы и экспрессии натрий-глюкозного котранспортера-1 (НГЛТ-1), которые участвуют в транспорте глюкозы внутрь клеток [68], продукции ферментов, обеспечивающих гидролиз клетчатки, белков, жиров, углеводов/крахмала, деконъюгацию желчных кислот, синтез витаминов, аминокислот, холестерина, мочевой кислоты, органических кислот. Выработка лейцинаминопептидазы, принадлежащей к семейству цинковых металлопротеаз, способствует опосредованному увеличению протеолиза малых N-концевых пептидов, что препятствует замедлению процессов пищеварения [69].

Целостность кишечного эпителиального барьера обеспечивается благодаря продукции цинксвязывающей металлопротеазы, принадлежащей к семейству пептидаз M1, стимуляции выработки кишечных полиаминов (спермидина и спермина), участвующих в созревании энтероцитов [70], регуляции рециркуляции E-кадгерина [21], увеличению экспрессии ZO-1 (Zonula occludens-1), Occludin (Окклюдина), Claudin-3 (Клодина-3), муцин-ассоциированного белка MUC-2 и MUC-3 в кишечнике [46], снижению проницаемости кишечного барьера, опосредованного фосфорилированием белка межклеточных соединений. Важными компонентами поддержания целостности и полноценного функционирования кишечного эпителиального барьера являются увеличение синтеза белка и энергии и восстановление общей метаболической активности эпителиальных клеток, препятствие их апоптотической гибели наряду с восстановлением клеток за счет динамической активации коллагенового рецептора интегрина α2β1.

Sb CNCM I-745 за счет комплексного воздействия на микробно-тканевой комплекс кишечника изменяют соотношение важных продуцентов серотонина, снижая соотношение Firmicutes/Bacteroidetes за счет уменьшения Escherichia_Shigella, Alistipes, Clostridium XlVa, Saccharibacteria_genera_incertae_sedis и увеличения Parasutterella [70], что в сочетании с активацией кишечного переносчика серотонина и последующего снижения биодоступности серотонина в синапсе ослабляет сокращения подвздошной кишки, вызванных 5-HT (серотонином) [71] и уменьшает выраженность симптомов у пациентов с синдромом раздраженного кишечника.

Установленные механизмы действия и основные эффекты (табл. 1) являются основанием для включения Sb CNCM I-745 в схемы терапии широкого спектра инфекционных и неинфекционных заболеваний.

 

Таблица 1. Установленные механизмы действия и основные эффекты Sb CNCM I-745

Table 1. Established mechanisms of action and main effects of Sb CNCM I-745

Эффект

Источник

Антимикробное действие

Изменяет структуру H. pylori

Y. Vandenplas и соавт. [26]

Уменьшает количество амеб E. histolytica, содержащих эритроциты

M. Rigothier и соавт. [39]

Действует как ловушка для рецепторов EPEC, S. typhimurium, Salmonella Enteritidis, A. hemolysin

B. Gedek [21], X. Wu и соавт. [22], R. Badia и соавт. [23]

Уменьшает количество внутриклеточных EPEC

B. Gedek [21], J. Buts и соавт. [34]

Ингибирует рост B. cereus, Y. enterocolitica и S. aureus

H. Goktas и соавт. [15]

Снижает адгезию патогенов к эпителиальным клеткам

A. Murzyn и соавт. [31]

Продуцирует уксусную кислоту на уровнях, обладающих антибактериальной активностью

P. Pais и соавт. [13], B. Offei и соавт. [30]

Продуцирует каприновую кислоту, обладающую антиадгезионным действием и ингибирующую адгезию клеток C. albicans к абиотическим поверхностям и эпителиальным клеткам кишечника, а также снижающую эффлюксную активность транспортера множественной лекарственной устойчивости (MDR) Cdr1p C. albicans, что повышает чувствительность патогена к флуконазолу

A. Murzyn и соавт. [31], J. Suchodolski и соавт. [32]

Подавляет активность A. flavus и A. niger, P. expansum, F. oxysporum и A. alternata

R. Khadivi и соавт. [25]

Снижает паразитарную нагрузку при лямблиозе (G. lamblia), нарушая прикрепление трофозоитов к эпителию, увеличивает высоту кишечных ворсинок и глубину крипт, сохраняет продукцию муцина

M. Ribeiro и соавт. [29]

Опосредованное противовирусное действие за счет сочетания иммуномодулирующих эффектов, включающих стимуляцию иммунной активности организма, выработку Ig, синтез противовоспалительных цитокинов и хемокинов, стимуляцию иммунного прайминга; подавление окислительного стресса в инфицированных вирусом клетках и уменьшение секреции хлоридов, а также продукция ряда биоактивных метаболитов

Е.Л. Ситкина и соавт. [41]

Противотоксические эффекты

Блокирует связывание токсина с рецептором (токсина А C. difficile) и создает стерическое препятствие для взаимодействия токсинов с рецепторами

I. Castagliuolo и соавт. [33]

Связывает токсин с рецептором-приманкой на поверхности дрожжевой клетки (для холерного токсина)

R. Brandão и соавт. [24]

Связывает афлатоксины (АФМ1), продуцируемые A. flavus и A. parasiticus

R. Khadivi и соавт. [25]

Прямое разрушение токсина: продукция протеазы 54-kDa, разрушающей токсины A и B C. difficile, эндотоксин E. coli; синтез белка массой 120 кДа против холерного токсина

I. Castagliuolo и соавт. [33], N. Vidon и соавт. [35]

Дефосфорилирует липополисахарид (например штамм E. coli O55B5) за счет продукции протеин-фосфатазы 63 kDa, разрушающей липополисахарид E. сoli

B. Gedek [21], J. Buts и соавт. [34]

Связывает протективный антиген (PA) B. anthracis путем его адгезии к клеточной стенке и индукции его расщепления секретируемыми протеазами

R. Pontier-Bres и соавт. [40]

Синтезирует белки, снижающие секрецию воды, опосредованную как цАМФ-, так и Ca2+-сигнальными путями регуляции секреции Cl- (холерного токсина)

D. Czerucka и соавт. [36], D. Czerucka и соавт. [37]

Противовоспалительная активность и неспецифическое иммуномодулирующее действие

Активирует комплемент и миграцию моноцитов и гранулоцитов

J. Caetano и соавт. [56]

Усиливает иммунный ответ слизистой оболочки и повышает уровни секреторного IgA в кишечнике

G. Zanello и соавт. [42], S. Generoso и соавт. [50]

Способствует более ранней выработке ИФН-γ и ИЛ-12

S. Thomas и соавт. [57]

Ингибирует активацию Т-клеток, вызванную дендритными клетками

G. Dalmasso и соавт. [44]

Изменяет миграцию лимфоцитов в модели хронического воспалительного заболевания кишечника

G. Dalmasso и соавт. [44]

Изменяет адгезию лимфоцитов к эндотелиальным клеткам, улучшает клеточную подвижность и адгезию

G. Dalmasso и соавт. [44]

Снижает экспрессию провоспалительных цитокинов (ИЛ-8, 6, 1β, ФНО-α и ИФН-γ) путем ингибирования NF-κB и стимуляции путей Nrf2

G. Dalmasso и соавт. [44], S. Dahan и соавт. [47], H. Gao и соавт. [48], S. Sougioultzis и соавт. [51]

Снижает секрецию ИЛ-8 посредством ингибирования сигнальных путей NF-κB и MAPK

S. Dahan и соавт. [47]

Блокирует активацию киназ ERK1/2 и MAP при бактериальных инфекциях, в том числе C. difficile, Shigella и др., вызванных грамотрицательными микроорганизмами

X. Chen и соавт. [38], S. Sougioultzis и соавт. [51]

Увеличивает экспрессию противовоспалительного цитокина ИЛ-10

S. Generoso и соавт. [50]

Модулирует миграционное поведение Т-клеток и увеличивает захват Т-хелперных клеток в брыжеечные лимфатические узлы (при инфекции, вызванной E. coli и другими грамотрицательными микроорганизмами, C. albicans)

G. Dalmasso и соавт. [44], S. Sougioultzis и соавт. [51], S. Thomas и соавт. [57]

Подавляет пролиферации Т-хелперов 17-го типа (Th17) и врожденных лимфоидных клеток 3-го типа (ILC3)

C. Ahmad Zhang и соавт. [45]

Модулирует сигнальный путь FXR-NLRP3 со снижением пироптоза макрофагов

L. Yang и соавт. [46]

Усиливает фагоцитоз и бактерицидную способность макрофагов в отношении Clostridium perfringens

B. Wang и соавт. [43]

Продуцирует тиоредоксин (Trx), снижающий активность воспаления и окислительного стресса в кишечной стенке, усиливает защиту кишечного барьера, подавляет апоптоз

X. Qin и соавт. [49]

Смягчает окислительное повреждение толстой кишки за счет повышения уровней антиоксидантных ферментов (супероксиддисмутазы, каталазы и гемоксигеназы-1) и глутатиона, снижения накопления малонового диальдегида

H. Gao и соавт. [48]

Стимулирует выработку противовоспалительных молекул в колоноцитах человека, таких как PPAR-γ

X. Chen и соавт. [38]

Достоверно снижает уровень СРБ, повышая синтез IgA и количество CD8, нормализуя соотношение CD4/CD8

T. Ozkan и соавт. [58]

Трофическое (ферментативное) влияние на восстановление функции энтероцитов, препятствие их разрушению и способность восстанавливать клетки кишечника, восстановление выработки ферментов

Предотвращает апоптоз и синтез ФНО-α

S. Dahan и соавт. [47]

Уменьшает мукозит

J. Buts и соавт. [34]

Стимулирует выработку белка и энергии, восстанавливает метаболическую активность в эпителиальных клетках толстой кишки

G. Zanello и соавт. [42]

Усиливает высвобождение ферментов мембран щеточной каймы (лактазы, мальтазы, альфа-глюкозидазы, щелочной фосфатазы и α,α-трегалазы) через путь GRB2-SHC-CrkII-Ras-GAP-Raf-ERK1,2

P. Pais и соавт. [13], F. Joly и соавт. [66]

Вырабатывает лейцинаминопептидазу, способствует опосредованному увеличению протеолиза малых N-концевых пептидов, что препятствует замедлению процессов пищеварения

J. Buts и соавт. [69]

Усиливает всасывание D-глюкозы, сопряженной с Na+, и экспрессию натрий-глюкозного котранспортера-1 (НГЛТ-1), которые участвуют в транспорте глюкозы внутрь клеток

P. Röder и соавт. [68]

Стимулирует выработку гликопротеинов в щеточной кайме

H. Goktas и соавт. [15]

Стимулирует выработку кишечных полиаминов (спермидина и спермина) за счет высвобождения цинксвязывающей металлопротеазы, принадлежащей к семейству пептидаз M1

P. Pais и соавт. [13], J. Buts и соавт. [69], J. Buts и соавт. [62]

Восстанавливает нормальный уровень КЦЖК в толстой кишке

L. McFarland [67], J. Buts и соавт. [62]

Стабилизирует барьерную функцию ЖКТ и укрепляет плотные соединения энтероцитов

X. Wu и соавт. [22], G. Zanello и соавт. [46], S. Dahan [47]

Продуцирует активные метаболиты, такие как: N-метилаланин (ингибирование распространения вирусов и роста опухолевых клеток, а также стимуляция иммунного ответа); п-аминобензойная кислота (антибактериальное и противоопухолевое действие); тирозол (антиоксидантное действие и ингибирование патогенов); глицерофосфохолин (предотвращает связанное со старением снижение когнитивных функций и способствует липидному обмену); 1-аминоциклопропанкарбоновая кислота (защита нейронов и противосудорожное средство); 2-гидрокси-4-метилпентановая кислота (антибактериальные эффекты); индоацетальдегид и индолепируват (укрепление кишечного барьера и антиоксидантная защита); L-3-фенилмолочная кислота и фенилмолочная кислота (антибактериальные эффекты); харман (противоопухолевая, антиоксидантная и антибактериальная активность)

J. Fu и соавт. [16]

Восстанавливает целостность кишечного барьера, регулируя рециркуляцию E-кадгерина

B. Gedek [21]

Увеличивает экспрессию ZO-1, Occludin, Claudin-3, муцин-ассоциированного белка MUC-2 в кишечнике

L. Yang и соавт. [46], H. Gao и соавт. [48]

Уменьшает гиперплазию крипт и повреждение клеток в моделях колита

X. Wu и соавт. [22]

Подавляет моторику толстой кишки посредством активации кишечного переносчика серотонина и последующего снижения биодоступности серотонина в синапсе. Ослабляет сокращения подвздошной кишки, вызванных 5-HT (серотонином)

Y. Gu и соавт. [70], P. Girard и соавт. [71]

 

Sb CNCM I-745 занимает уникальное положение среди пробиотиков. Это единственная пробиотическая дрожжевая культура, а не бактерия, механизмы действия которой реализуются на всех ключевых уровнях, описанных ранее. Штамм обладает природной устойчивостью к антибиотикам, его можно принимать одновременно с ними, не опасаясь, что пробиотик будет инактивирован. Sb CNCM I-745 не обменивается генами устойчивости к антибиотикам с патогенными бактериями, что исключает вклад в глобальную проблему антибиотикорезистентности. Кроме того, при включении Sb CNCM I-745 в схемы комплексной терапии H. pylori-инфекции к окончанию лечения антибиотиками в составе резистома фекалий пациентов отмечается уменьшение числа генов устойчивости к противомикробным препаратам, обеспечивающим нечувствительность H. pylori к линкозамидам, тетрациклинам, макролидам, бета-лактамам и стрептограмину В [72].

Фенотипические характеристики Sb CNCM I-745, которые помогают снизить опасения по поводу безопасности при использовании у людей, включают отсутствие споруляции [73] и стабильной колонизации кишечника [74] в присутствии нормальной кишечной микробиоты. Штамм Sb CNCM I-745 более устойчив к высоким температурам, в том числе тела человека, растет быстрее Saccharomyces cerevisiae, сохраняет жизнеспособность при прохождении через желудок и двенадцатиперстную кишку, оказывает позитивные эффекты за счет влияния на метаболические процессы и баланс кишечной микробиоты как у здоровых лиц, так и у тех, кто имеет широкий спектр инфекционных и неинфекционных заболеваний [75]. Sb CNCM I-745 в Российской Федерации представлен в виде единственного лекарственного препарата Энтерол® и не имеет аналогов.

Широкая доказательная база, более 30 метаанализов, основанных на проведенных по всему миру свыше 130 исследованиях, послужили основанием для включения Sb CNCM I-745 в большое число руководств и клинических рекомендаций во многих странах, в том числе и в рекомендации Минздрава России.

Мультимодальность эффектов применительно к штамму Sb CNCM I-745 означает, что он оказывает комплексное и разнообразное воздействие на организм хозяина, выходя далеко за пределы простой нормализации пищеварения. Современные исследования подтверждают, что Sb CNCM I-745 влияют на иммунную, нервную, эндокринную и метаболическую системы, реализуя свои эффекты через несколько ключевых механизмов посредством антимикробной и противовоспалительной активности, трофического влияния на микробно-тканевой комплекс др., а также каскада вторичных эффектов посредством поддержания баланса и восстановления нормальной микробиоты ЖКТ. Эта многогранность молекулярно идентифицированных предсказуемых механизмов действия полностью соответствует современным представлениям о так называемых осях взаимодействий: «кишечник – микробиота – головной мозг», «кишечник – микробиота – печень» и др.».

Заключение

Современная медицина базируется на активном внедрении различных биотехнологических разработок в профилактику и терапию инфекционных и неинфекционных болезней человека. Пробиотики и пребиотики занимают значительную долю рынка микробиоценоз-ориентированных технологий. Мультимодальные эффекты пробиотиков – это результат их сложного и многоуровневого взаимодействия с организмом человека. Они выступают активными модуляторами иммунитета, обмена веществ и даже нервной деятельности. Выбор в пользу качественных лекарственных препаратов с доказанной эффективностью и известными молекулярными механизмами действия, каким является Sb CNCM I-745 (лекарственный препарат Энтерол®), позволяет наиболее полно использовать данный терапевтический и профилактический потенциал.

Раскрытие конфликта интересов. Автор заявляет об отсутствии личных, профессиональных или финансовых отношений, которые могли бы быть расценены как конфликт интересов в рамках данного исследования. Независимость научной оценки, интерпретации данных и подготовки рукописи сохранялась на всех этапах работы, включая этап финансирования проекта со стороны ООО «Биокодекс».

Disclosure of interest. The author declares no personal, professional, or financial relationships that could be regarded as a conflict of interest for this study. The independence of the scientific assessment, data interpretation, and manuscript writing was maintained at all stages of work, including the stage of financing by Biocodex LLC.

Вклад автора. Автор декларирует соответствие своего авторства международным критериям ICMJE.

Author’s contribution. The author declares the compliance of his authorship according to the international ICMJE criteria.

Источник финансирования. Материал подготовлен при финансовой поддержке ООО «Биокодекс». Спонсор не участвовал в сборе, анализе данных, интерпретации результатов. При подготовке рукописи автор сохранил независимость мнений.

Funding source. The paper was prepared with the financial support of Biocodex LLC. The sponsor was not involved in the data collection and analysis and the interpretation of results. In preparing the manuscript, the author maintained the independence of opinion.

Раскрытие информации об использовании ИИ. При написании статьи ИИ не использовался.

Disclosing the use of AI. No AI was used when writing the article.

×

About the authors

Sergey M. Zakharenko

Federal Scientific and Clinical Center of Infectious Diseases

Author for correspondence.
Email: zsm1@mail.ru
ORCID iD: 0000-0001-8666-6118

Cand. Sci. (Med.), Assoc. Prof.

Russian Federation, Saint Petersburg

References

  1. Скворцова В.И. IV Форум будущих технологий «Биоэкономика для человека». Сессия «Инновационные биотехнологии: от разработки до реализации». М. 2026 [Skvortsova VI. IV Forum budushchikh tekhnologii «Bioekonomika dlia cheloveka». Sessiia «Innovatsionnye biotekhnologii: ot razrabotki do realizatsii». Moscow. 2026 (in Russian)].
  2. Velmurugan G. Gut microbiota in toxicological risk assessment of drugs and chemicals: The need of hour. Gut Microbes. 2018;9(5):465-8. doi: 10.1080/19490976.2018.1445955
  3. Do Nascimento S, Theodosiou AA, Sergaki C. Microbiotoxicity: an under-recognised player in drug efficacy, toxicity, and health outcomes. NPJ Antimicrob Resist. 2025;3(1):102. doi: 10.1038/s44259-025-00165-5
  4. Human Microbiome Market By Product (Probiotics, Prebiotics, Medical Foods, Drugs), By Application (Therapeutics, Diagnostics), By Disease Type (Infectious, Metabolic, Endocrine), By Geography, Size, Global Industry Report, Forecast, 2021–2030. JUN-2025. 197 p.
  5. Human Microbiome Market Size & Share, by Product (Drug. Prebiotiv, Probiotic, Synbiotics, Diagnostics); Disease; Route; CDMO; Type – Global Supply & Demand Analysis, Growth Forecasts, Statistical Report 2026–2035. Available at: https://www.researchnester.com/reports/human-microbiome-market/4062. Accessed: 20.03.2026.
  6. Nardone GP, Cicero AFG, Gallelli L, Berni Canani R. Managing Gut Dysbiosis: Clinical Evidence and Perspectives on Saccharomyces boulardii CNCM I-745 for Diarrhoeal Conditions in Adults and Children. Microorganisms. 2026;14(1):150. doi: 10.3390/microorganisms14010150
  7. Баранов А.А., Волынец Г.В., Власов Н.Н., и др. Проект клинических рекомендаций по диагностике и лечению метаболически ассоциированной жировой болезни печени у детей (неалкогольной жировой болезни печени). Педиатрическая фармакология. 2025;22(2):147-63 [Baranov AA, Volynets GV, Vlasov NN, et al. Draft Clinical Guidelines for the Diagnosis and Treatment of Metabolically Associated Fatty Liver Disease in Children (Non-Alcoholic Fatty Liver Disease). Pediatric pharmacology. 2025;22(2):147-63 (in Russian)]. doi: 10.15690/pf.v22i2.2884
  8. Венцловайте Н.Д., Горячева Л.Г., Грешнякова В.А., и др. Синдром избыточного бактериального роста у детей подросткового возраста на фоне хронического вирусного гепатита С. Детские инфекции. 2021;20(1):19-22 [Venclovaite ND, Goryacheva LG, Greshnyakova VA, et al. Bacterial overgrowth syndrome in adolescents with Сhronic viral hepatitis C. Children infections. 2021;20(1):19-22 (in Russian)]. doi: 10.22627/2072-8107-2021-20-1-19-22
  9. Жданов К.В., Гусев Д.А., Захаренко С.М., и др. Синдром избыточного бактериального роста у больных хроническим гепатитом С. Журнал инфектологии. 2011;3(4):98-101 [Zhdanov KV, Gusev DA, Zacharenko SM, et al. Small intestinal bacterial overgrowth in patients with chronic hepatitis C. Journal Infectology. 2011;3(4):98-101 (in Russian)]. doi: 10.22625/2072-6732-2011-3-4-98-101
  10. Венцловайте Н.Д., Горячева Л.Г., Гончар Н.В., и др. Патогенетическая связь между состоянием микробиоты кишечника и заболеваниями печени. Инфекционные болезни: Новости. Мнения. Обучение. 2022;11(2):97-105 [Pediatric Research and Clinical Center for Infectious Diseases under the Federal Medical Biological Agency, Saint-Petersburg. Pathogenetic relationship between the condition gut microbiota and liver diseases. Infectious diseases: News, Opinions, Training. 2022;11(2):97-105 (in Russian)]. doi: 10.33029/2305-3496-2022-11-2-97-105
  11. Суворов А.Н., Захаренко С.М., Алехина Г.Г. Энтерококки как пробиотики выбора. Клиническое питание. 2003;1:26-9 [Suvorov AN, Zakharenko SM, Alekhina GG. Enterokokki kak probiotiki vybora. Klinicheskoe pitanie. 2003;1:26-9 (in Russian)].
  12. Hu C, Shen H. Microbes in Health and Disease: Human Gut Microbiota. Applied Sciences. 2024;14(23):11354. doi: 10.3390/app142311354
  13. Pais P, Oliveira J, Almeida V, et al. Transcriptome-wide differences between Saccharomyces cerevisiae and Saccharomyces cerevisiae var. boulardii: Clues on host survival and probiotic activity based on promoter sequence variability. Genomics. 2021;113(2):530-9. doi: 10.1016/j.ygeno.2020.11.034
  14. Neut C, Mahieux S, Dubreuil LJ. Antibiotic susceptibility of probiotic strains: Is it reasonable to combine probiotics with antibiotics? Med Mal Infect. 2017;47(7):477-83. doi: 10.1016/j.medmal.2017.07.001
  15. Goktas H, Dertli E, Sagdic O. Comparison of functional characteristics of distinct Saccharomyces boulardii strains isolated from commercial food supplements. LWT. 2020;136:110340. doi: 10.1016/j.lwt.2020.110340
  16. Fu J, Liu J, Wen X, et al. Unique Probiotic Properties and Bioactive Metabolites of Saccharomyces boulardii. Probiotics Antimicrob Proteins. 2023;15(4):967-82. doi: 10.1007/s12602-022-09953-1
  17. Gorbach S. Probiotics and gastrointestinal health. Am J Gastroenterol. 2002;95(1):S2-4. doi: 10.1016/s0002-9270(99)00806-0
  18. Klein SM, Elmer GW, McFarland LV, et al. Recovery and elimination of the biotherapeutic agent, Saccharomyces boulardii, in healthy human volunteers. Pharm Res. 1993;10(11):1615-9. doi: 10.1023/a:1018924820333
  19. Martin SW. Survival of Saccharomyces boulardii in the Rat Gastrointestinal Tract and Effects of Dietary Fiber. Microb Ecol Health Dis. 2002;11(1):29-34. doi: 10.1080/089106099435899
  20. Elmer GW, McFarland LV, Surawicz CM, et al. Behaviour of Saccharomyces boulardii in recurrent Clostridium difficile disease patients. Aliment Pharmacol Ther. 1999;13(12):1663-8. doi: 10.1046/j.1365-2036.1999.00666.x
  21. Gedek BR. Adherence of Escherichia coli serogroup O 157 and the Salmonella typhimurium mutant DT 104 to the surface of Saccharomyces boulardii. Mycoses. 1999;42(4):261-4. doi: 10.1046/j.1439-0507.1999.00449.x
  22. Wu X, Vallance BA, Boyer L, et al. Saccharomyces boulardii ameliorates Citrobacter rodentium-induced colitis through actions on bacterial virulence factors. Am J Physiol Gastrointest Liver Physiol. 2008;294(1):G295-306. doi: 10.1152/ajpgi.00173.2007
  23. Badia R, Brufau MT, Guerrero-Zamora AM, et al. β-Galactomannan and Saccharomyces cerevisiae var. boulardii modulate the immune response against Salmonella enterica serovar Typhimurium in porcine intestinal epithelial and dendritic cells. Clin Vaccine Immunol. 2012;19(3):368-76. doi: 10.1128/CVI.05532-11
  24. Brandão RL, Castro IM, Bambirra EA, et al. Intracellular signal triggered by cholera toxin in Saccharomyces boulardii and Saccharomyces cerevisiae. Appl Environ Microbiol. 1998;64(2):564-8. doi: 10.1128/AEM.64.2.564-568.1998
  25. Khadivi R, Razavilar V, Anvar A, Akbari Adreghani B. Aflatoxin M1-Binding Ability of Selected Lactic Acid Bacteria Strains and Saccharomyces boulardii in the Experimentally Contaminated Milk Treated with Some Biophysical Factors. Arch Razi Inst. 2020;75(1):63-73. doi: 10.22092/ari.2019.123985.1265
  26. Vandenplas Y, Brunser O, Szajewska H. Saccharomyces boulardii in childhood. Eur J Pediatr. 2008;168(3):253-65. doi: 10.1007/s00431-008-0879-7
  27. Tasteyre A, Barc M-C, Karjalainen T, et al. Inhibition of in vitro cell adherence of Clostridium difficile by Saccharomyces boulardii. Microb Pathog. 2002;32(5):219-25. doi: 10.1006/mpat.2002.0495
  28. Baek K, Lee H, Jeong K, et al. Parabiotic immunomodulatory activity of yeast cell wall polysaccharides from Saccharomyces cerevisiae and S. boulardii. J Funct Foods. 2024;123:106577. doi: 10.1016/j.jff.2024.106577
  29. Ribeiro MRS, Oliveira DR, Oliveira FMS, et al. Effect of probiotic Saccharomyces boulardii in experimental giardiasis. Benef Microbes. 2018;9(5):789-97. doi: 10.3920/BM2017.0155
  30. Offei B, Vandecruys P, De Graeve S, et al. Unique genetic basis of the distinct antibiotic potency of high acetic acid production in the probiotic yeast Saccharomyces cerevisiae var. boulardii. Genome Res. 2019;29(9):1478-94. doi: 10.1101/gr.243147.118
  31. Murzyn A, Krasowska A, Stefanowicz P, et al. Capric acid secreted by S. boulardii inhibits C. albicans filamentous growth, adhesion and biofilm formation. PLoS One. 2010;5(8):e12050. doi: 10.1371/journal.pone.0012050
  32. Suchodolski J, Derkacz D, Bernat P, Krasowska A. Capric acid secreted by Saccharomyces boulardii influences the susceptibility of Candida albicans to fluconazole and amphotericin B. Sci Rep. 2021;11(1):6519. doi: 10.1038/s41598-021-86012-9
  33. Castagliuolo I, LaMont JT, Nikulasson ST, Pothoulakis C. Saccharomyces boulardii protease inhibits Clostridium difficile toxin A effects in the rat ileum. Infect Immun. 1996;64(12):5225-32. doi: 10.1128/iai.64.12.5225-5232.1996
  34. Buts JP, Dekeyser N, Stilmant C, et al. Saccharomyces boulardii produces in rat small intestine a novel protein phosphatase that inhibits Escherichia coli endotoxin by dephosphorylation. Pediatr Res. 2006;60(1):24-9. doi: 10.1203/01.pdr.0000220322.31940.29
  35. Vidon N, Huchet B, Rambaud JC. Influence de "Saccharomyces boulardii" sur la sécrétion jéjunale induite chez le rat par la toxine cholérique. Gastroenterol Clin Biol. 1986;10(1):13-6 (in French).
  36. Czerucka D, Roux I, Rampal P. Saccharomyces boulardii inhibits secretagogue-mediated adenosine 3',5'-cyclic monophosphate induction in intestinal cells. Gastroenterology. 1994;106(1):65-72. doi: 10.1016/s0016-5085(94)94403-2
  37. Czerucka D, Rampal P. Effect of Saccharomyces boulardii on cAMP- and Ca2+ -dependent Cl- secretion in T84 cells. Dig Dis Sci. 1999;44(11):2359-68. doi: 10.1023/a:1026689628136
  38. Chen X, Kokkotou EG, Mustafa N, et al. Saccharomyces boulardii inhibits ERK1/2 mitogen-activated protein kinase activation both in vitro and in vivo and protects against Clostridium difficile toxin A-induced enteritis. J Biol Chem. 2006;281(34):24449-54. doi: 10.1074/jbc.M605200200
  39. Rigothier MC, Maccario J, Gayral P. Inhibitory activity of saccharomyces yeasts on the adhesion of Entamoeba histolytica trophozoites to human erythrocytes in vitro. Parasitol Res. 1994;80(1):10-5. doi: 10.1007/BF00932617
  40. Pontier-Bres R, Rampal P, Peyron JF, et al. The Saccharomyces boulardii CNCM I-745 strain shows protective effects against the B. anthracis LT toxin. Toxins (Basel). 2015;7(11):4455-67. doi: 10.3390/toxins7114455
  41. Ситкина Е.Л., Иванова Р.А., Ситкин С.И., и др. Острый норовирусный гастроэнтерит: эпидемиология, клиника, лечение и профилактика. Вопросы практической педиатрии. 2025;20(1):83-8 [Sitkina EL, Ivanova RA, Sitkin SI, et al. Acute norovirus gastroenteritis: epidemiology, clinical features, treatment and prevention. Vopr. prakt. pediatr. (Clinical Practice in Pediatrics). 2025;20(1):83-8 (in Russian)]. doi: 10.20953/1817-7646-2025-1-83-98
  42. Zanello G, Meurens F, Berri M, Salmon H. Saccharomyces boulardii effects on gastrointestinal diseases. Curr Issues Mol Biol. 2009;11(1):47-58.
  43. Wang B, Hussain A, Zhou Y, et al. Saccharomyces boulardii attenuates inflammatory response induced by Clostridium perfringens via TLR4/TLR15-MyD8 pathway in HD11 avian macrophages. Poult Sci. 2020;99(11):5356-65. doi: 10.1016/j.psj.2020.07.045
  44. Dalmasso G, Cottrez F, Imbert V, et al. Saccharomyces boulardii inhibits inflammatory bowel disease by trapping T cells in mesenteric lymph nodes. Gastroenterology. 2006;131(6):1812-25. doi: 10.1053/j.gastro.2006.10.001
  45. Ahmad Zhang C, Wang Y, et al. Saccharomyces boulardii (CNCM I-745) alleviates collagen-induced arthritis by partially maintaining intestinal mucosal integrity through TLR2/MYD88/NF-κB pathway inhibition. Int Immunopharmacol. 2024;139:112738. doi: 10.1016/j.intimp.2024.112738
  46. Yang L, Li W, Zhao Q, et al. Saccharomyces boulardii Alleviates Colitis by Regulating FXR-NLRP3 Mediated Macrophage Pyroptosis. J Inflamm Res. 2025;18:3161-76. doi: 10.2147/JIR.S504957
  47. Dahan S, Dalmasso G, Imbert V, et al. Saccharomyces boulardii interferes with enterohemorrhagic Escherichia coli-induced signaling pathways in T84 cells. Infect Immun. 2003;71(2):766-73. doi: 10.1128/IAI.71.2.766-773.2003
  48. Gao H, Li Y, Sun J, et al. Saccharomyces boulardii Ameliorates Dextran Sulfate Sodium-Induced Ulcerative Colitis in Mice by Regulating NF-κB and Nrf2 Signaling Pathways. Oxid Med Cell Longev. 2021;2021:1622375. doi: 10.1155/2021/1622375
  49. Qin X, Zhao Q, Zhao Q, et al. A Saccharomyces boulardii-derived antioxidant protein, thioredoxin, ameliorates intestinal inflammation through transactivating epidermal growth factor receptor. Pharmacol Res. 2024;208:107372. doi: 10.1016/j.phrs.2024.107372
  50. Generoso SV, Viana ML, Santos RG, et al. Protection against increased intestinal permeability and bacterial translocation induced by intestinal obstruction in mice treated with viable and heat-killed Saccharomyces boulardii. Eur J Nutr. 2011;50(4):261-9. doi: 10.1007/s00394-010-0134-7
  51. Sougioultzis S, Simeonidis S, Bhaskar KR, et al. Saccharomyces boulardii produces a soluble anti-inflammatory factor that inhibits NF-kappaB-mediated IL-8 gene expression. Biochem Biophys Res Commun. 2006;343(1):69-76. doi: 10.1016/j.bbrc.2006.02.080
  52. Buts JP, Bernasconi P, Van Craynest MP, et al. Response of human and rat small intestinal mucosa to oral administration of Saccharomyces boulardii. Pediatr Res. 1986;20(2):192-6. doi: 10.1203/00006450-198602000-00020
  53. Qamar A, Aboudola S, Warny M, et al. Saccharomyces boulardii stimulates intestinal immunoglobulin A immune response to Clostridium difficile toxin A in mice. Infect Immun. 2001;69(4):2762-5. doi: 10.1128/IAI.69.4.2762-2765.2001
  54. Guarner F, Sanders ME, Szajewska H, et al. World Gastroenterology Organisation Global Guidelines: Probiotics and Prebiotics. J Clin Gastroenterol. 2024;58(6):533-53. doi: 10.1097/MCG.0000000000002002
  55. Rodrigues AC, Cara DC, Fretez SH, et al. Saccharomyces boulardii stimulates sIgA production and the phagocytic system of gnotobiotic mice. J Appl Microbiol. 2000;89(3):404-14. doi: 10.1046/j.1365-2672.2000.01128.x
  56. Caetano JA, Paramés MT, Babo MJ, et al. Immunopharmacological effects of Saccharomyces boulardii in healthy human volunteers. Int J Immunopharmacol. 1986;8(3):245-59. doi: 10.1016/0192-0561(86)90106-2
  57. Thomas S, Przesdzing I, Metzke D, et al. Saccharomyces boulardii inhibits lipopolysaccharide-induced activation of human dendritic cells and T cell proliferation. Clin Exp Immunol. 2009;156(1):78-87. doi: 10.1111/j.1365-2249.2009.03878.x
  58. Ozkan TB, Sahin E, Erdemir G, Budak F. Effect of Saccharomyces boulardii in children with acute gastroenteritis and its relationship to the immune response. J Int Med Res. 2007;35(2):201-12. doi: 10.1177/147323000703500204
  59. Czerucka D, Dahan S, Mograbi B, et al. Saccharomyces boulardii preserves the barrier function and modulates the signal transduction pathway induced in enteropathogenic Escherichia coli-infected T84 cells. Infect Immun. 2000;68(10):5998-6004. doi: 10.1128/IAI.68.10.5998-6004.2000
  60. Gao H, Li Y, Xu J, et al. Saccharomyces boulardii protects against murine experimental colitis by reshaping the gut microbiome and its metabolic profile. Front Microbiol. 2023;14:1204122. doi: 10.3389/fmicb.2023.1204122
  61. Schneider SM, Girard-Pipau F, Filippi J, et al. Effects of Saccharomyces boulardii on fecal short-chain fatty acids and microflora in patients on long-term total enteral nutrition. World J Gastroenterol. 2005;11(39):6165-9. doi: 10.3748/wjg.v11.i39.6165
  62. Buts J, Keyser ND, Raedemaeker LD. Saccharomyces boulardii Enhances Rat Intestinal Enzyme Expression by Endoluminal Release of Polyamines. Pediatr Res. 2007;36(4):522-2. doi: 10.1203/00006450-199410000-00019
  63. Sezer A, Usta U, Cicin I. The effect of Saccharomyces boulardii on reducing irinotecan-induced intestinal mucositis and diarrhea. Med Oncol. 2009;26(3):350-7. doi: 10.1007/s12032-008-9128-1
  64. Czerucka D, Piche T, Rampal P. Review article: yeast as probiotics – Saccharomyces boulardii. Aliment Pharmacol Ther. 2007;26(6):767-78. doi: 10.1111/j.1365-2036.2007.03442.x
  65. Breves G, Faul K, Schröder B, et al. Application of the colon-simulation technique for studying the effects of Saccharomyces boulardii on basic parameters of porcine cecal microbial metabolism disturbed by clindamycin. Digestion. 2000;61(3):193-200. doi: 10.1159/000007757
  66. Joly F, Nuzzo A, Czerucka D. Saccharomyces boulardii CNCM I-745. In: Marteau P, Doré J, editor. Gut Microbiota-a Full Fledged Organ. Paris: John Libbey Eurotext, 2017; p. 305-30.
  67. McFarland LV. Systematic review and meta-analysis of Saccharomyces boulardii in adult patients. World J Gastroenterol. 2010;16(18):2202-22. doi: 10.3748/wjg.v16.i18.2202
  68. Röder PV, Geillinger KE, Zietek TS, et al. The role of SGLT1 and GLUT2 in intestinal glucose transport and sensing. PLoS One. 2014;9(2):e89977. doi: 10.1371/journal.pone.0089977
  69. Buts JP, De Keyser N, Stilmant C, et al. Saccharomyces boulardii enhances N-terminal peptide hydrolysis in suckling rat small intestine by endoluminal release of a zinc-binding metalloprotease. Pediatr Res. 2002;51(4):528-34. doi: 10.1203/00006450-200204000-00021
  70. Gu Y, Wang C, Qin X, et al. Saccharomyces boulardii, a yeast probiotic, inhibits gut motility through upregulating intestinal serotonin transporter and modulating gut microbiota. Pharmacol Res. 2022;181:106291. doi: 10.1016/j.phrs.2022.106291
  71. Girard P, Verleye M, Castagné V. Serotoninergic Mechanisms of Action in the Relaxant Properties of Saccharomyces boulardii CNCM I-745 on the Intestine. Dig Dis Sci. 2025;70(1):191-202. doi: 10.1007/s10620-024-08786-y
  72. Cifuentes SG, Prado MB, Fornasini M, et al. Saccharomyces boulardii CNCM I-745 supplementation modifies the fecal resistome during Helicobacter pylori eradication therapy. Helicobacter. 2022;27(2):e12870. doi: 10.1111/hel.12870
  73. McCullough MJ, Clemons KV, McCusker JH, Stevens DA. Species identification and virulence attributes of Saccharomyces boulardii (nom. inval.). J Clin Microbiol. 1998;36(9):2613-7. doi: 10.1128/JCM.36.9.2613-2617.1998
  74. Edwards-Ingram L, Gitsham P, Burton N, et al. Genotypic and physiological characterization of Saccharomyces boulardii, the probiotic strain of Saccharomyces cerevisiae. Appl Environ Microbiol. 2007;73(8):2458-67. doi: 10.1128/AEM.02201-06
  75. Sen S, Mansell TJ. Yeasts as probiotics: Mechanisms, outcomes, and future potential. Fungal Genetics and Biology. 2020;137:103333. doi: 10.1016/j.fgb.2020.103333

Supplementary files

Supplementary Files
Action
1. JATS XML
2. Fig. 1. Antimicrobial and antitoxic effects of Sb CNCM I-745.

Download (717KB)
3. Fig. 2. Anti-inflammatory and immunomodulatory effects of Sb CNCM I-745.

Download (650KB)
4. Fig. 3. Trophic effect of Sb CNCM I-745.

Download (790KB)

Copyright (c) 2026 Consilium Medicum

Creative Commons License
This work is licensed under a Creative Commons Attribution-NonCommercial-ShareAlike 4.0 International License.

СМИ зарегистрировано Федеральной службой по надзору в сфере связи, информационных технологий и массовых коммуникаций (Роскомнадзор).
Регистрационный номер и дата принятия решения о регистрации СМИ: серия ПИ № ФС77-63969 от 18.12.2015. 
СМИ зарегистрировано Федеральной службой по надзору в сфере связи, информационных технологий и массовых коммуникаций (Роскомнадзор).
Регистрационный номер и дата принятия решения о регистрации СМИ: серия
ЭЛ № ФС 77 - 69134 от  24.03.2017.