Diabeticheskoe serdtse: skhvatka za mitokhondrii


Cite item

Full Text

Abstract

В настоящее время хорошо известно, что у больных сахарным диабетом (СД) стенокардия, инфаркт миокарда, застойная сердечная недостаточность и другие проявления коронарного атеросклероза встречаются значительно чаще, чем у лиц без СД Новые методы исследования микроциркуляторного коронарного русла сердца значительно расширили представления о роли микроваскулярной дисфункции в снижении резерва коронарного кровотока. Проблема коррекции миокардиального метаболизма при ишемической болезни сердца особенно актуальна для больных СД. В настоящее время имеется большое количество исследований, подтверждающих эффективность применения триметазидина, цитопротектора, блокирующего b-окисления жирных кислот, при ишемической болезни сердца у больных СД.

Full Text

В настоящее время хорошо известно, что у больных сахарным диабетом (СД) стенокардия, инфаркт миокарда, застойная сердечная недостаточность и другие проявления коронарного атеросклероза встречаются значительно чаще, чем у лиц без СД [1-5]. Хотя высокий уровень летальности при СД прежде всего определяется ускоренным развитием атеросклероза, нельзя не учитывать и другие, некоронарогенные факторы, ухудшающие кардиальный прогноз больных СД [6]. Экспериментальные и клинические данные свидетельствуют о том, что кровоснабжение левого желудочка при СД может страдать даже в отсутствие атеросклеротического поражения коронарных артерий. Новые методы исследования микроциркуляторного коронарного русла сердца значительно расширили представления о роли микроваскулярной дисфункции в снижении резерва коронарного кровотока. По данным позитрон-эмиссионной томографии, коронарный резерв больных СД типа 2 и при отсутствии атеросклеротического поражения основных коронарных артерий на 37% ниже, чем соответствующий показатель у здоровых лиц того же возраста. При этом степень снижения коронарного резерва достоверно зависит от уровня глюкозы натощак и концентрации в крови HbА1с и не зависит от липидного профиля крови. Снижение коронарного резерва у больных СД тем сильнее выражено, чем более выражены у них другие проявления микроангиопатии, в частности ретинопатия. Наиболее достоверным признаком развития ишемии миокарда принято считать появление при нагрузке транзиторных нарушений сегментарной сократимости левого желудочка сердца [7]. Стресс-эхокардиографические исследования левого желудочка у больных СД свидетельствуют о том, что до 50% больных с транзиторным снижением локальной сократимости миокарда не имеют гемодинамически значимых поражений коронарных артерий. Эти данные косвенно указывают на вклад микрососудистых нарушений в патологию коронарного кровообращения при СД. Схожие результаты получены и в отделении кардиологии Эндокринологического научного центра РАМН. По нашим данным, среди больных СД типа 2, имевших транзиторные нарушения сегментарной сократимости левого желудочка сердца во время стресс-эхокардиографии, у 30% лиц отсутствовали гемодинамически значимые нарушения коронарного кровотока, оцененного с помощью коронарной ангиографии. У больных СД, перенесших инфаркт миокарда, летальность почти в 2 раза выше, а застойная недостаточность кровообращения развивается в 3 раза чаще, чем у лиц без СД [8]. Считают, что у больных СД нарушению сократительной способности левого желудочка при ишемизации миокарда способствует специфическое состояние сердечной мышцы [6, 8]. Это специфическое состояние миокарда получило название диабетической кардиопатии. Хотя диабетическая кардиопатия как отдельное поражение встречается, по- видимому, нечасто, она может вносить существенный вклад в развитие недостаточности сердца, спровоцированной ишемической болезнью сердца. Диабетическая кардиопатия характеризуется гипертрофией миокардиоцитов, миокардиальным фиброзом. В миокарде желудочков отмечается увеличение экстрацеллюлярного матрикса, состоящего из коллагена 4-го типа, который окрашивается реактивом Шиффа. Среди метаболических расстройств при СД в кардиомиоцитах главенствующее положение занимают нарушения энергетического обмена. Энергетический обмен здорового сердца Механическая энергия миокарда поддерживается высокой скоростью потребления кислорода, обменом жирных кислот и углеводов [9, 10]. Энергия, освобождаемая при окислении жира и углеводов, превращается в АТФ и доставляется к сократительным элементам миокардиоцита, где она обеспечивает силу сокращения миокарда и работу Са++-насоса, задействованного в его диастолической релаксации. АТФ синтезируется при окислительном фосфорилировании в матриксе митохондрий. Скорость распада АТФ чрезвычайно велика. Около 5-10% АТФ, содержащегося в миокарде, расходуется за одно сердечное сокращение. Полное обновление всего запаса кардиального АТФ происходит каждые 10-15 с. В здоровом сердце всегда существует стабильная концентрация АТФ и аденозиндифосфата [11]. В нормальных условиях 60-90% всей АТФ возникает благодаря процессу окисления в митохондриях свободных жирных кислот (СЖК) [12-16]. Остальные 10-40% АТФ обеспечиваются митохондриальным окислением пировиноградной кислоты, основное количество которой образуется до этого в результате анаэробного распада глюкозы в цитоплазме миокардиальной клетки. Глюкозо-жирнокислотные взаимосвязи Между окислением глюкозы и окислением жирных кислот в клетке существуют определенные весьма важные взаимосвязи (рис. 1). Они отслеживаются уже на уровне поступления этих энергетических субстанций в миокард. Показано, что мембранный транспорт глюкозы ингибируется высокими концентрациями СЖК и наоборот. Однако ключевым моментом взаимодействия глюкозы и жирных кислот является конкуренция на уровне митохондрий при образовании ацетил-КоА. Увеличение в клетке конечного продукта повышенного -окисления СЖК ацетил-КоА обусловливает ингибирование пируватдегидрогеназы [17]. Кроме того, включение ацетил-КоА в цикл лимонной кислоты приводит к сопутствующему накоплению цитрата, который и угнетает гликолитическую активность фосфофруктокиназы [18]. Вследствие угнетения фосфофруктокиназы повышается концентрация глюкозы-б-фосфата, что в свою очередь подавляет активность гексокиназы. Это приводит к тому, что скорость фосфорилирования глюкозы падает [19], гликолиз замедляется, количество пирувата снижается и основным энергетическим источником становится окисление жирных кислот. Таким путем активация -окисления жирных кислот приводит к вытеснению метаболитов глюкозы из митохондрий и снижает активность процесса гликолиза в цитоплазме. Энергетический обмен при СД Традиционно нарушения энергетического обмена при СД объясняют подавляющим преобладанием в нем процессов -окисления жирных кислот и резким подавлением окисления глюкозы. Накопленные к настоящему времени данные свидетельствуют о том, что активация -окисления жирных кислот в митохондриях при СД тесно связана с нарушениями их синтеза в цитозоле. Эти изменения обмена жирных кислот оказывают решающее воздействие на прогноз выживаемости диабетического миокарда. Низкая концентрация инсулина при нелеченном или неадекватно леченном СД приводит к выпадению ингибирующего действия инсулина на процесс липолиза в адипоцитах жировой ткани. Это обусловливает повышение уровня СЖК в крови. Избыток СЖК оказывает специфическое влияние на метаболизм миокарда: угнетает процессы захвата кардиомиоцитами глюкозы, а также ингибирует ее окисление [12-16]. Вытеснение глюкозы из окислительного фосфорилирования облегчается тем, что транспортировка жирных кислот в митохондрии при СД резко повышена. В первую очередь это обусловлено высокой активностью карнитинпальмитоилтрансферазы-1 [20, 21], ключевого фермента транспортной цепи жирных кислот. Процесс-окисления жирных кислот при СД нормально функционирует. Активность ключевого фермента - окисления - -гидроксиацил-КоА-дегидрогеназы - сохранена [22] или слегка повышена [23]. Повышение уровня жирных кислот в крови и их усиленное поступление в митохондрии при активно функционирующем процессе -окисления приводят к избыточному накоплению в митохондриях конечного продукта процесса - ацетил-КоА. Кроме того, при СД нормально функционирует и цикл лимонной кислоты. Активность ферментов цикла лимонной кислоты, как правило, не страдает [22, 24, 25]. Это позволяет утверждать, что изменения энергетического метаболизма при СД в первую очередь затрагивают процессы образования ацетил-КоА. Высокое содержание в митохондриях ацетил-КоА и восстановительных потенциалов, возникающих в цикле лимонной кислоты, обусловливают ингибирование в митохондриях пируватдегидрогеназы [21, 26-29]. Необходимо отметить, однако, что экспериментальные данные позволяют предположить, что повышение уровня жирных кислот в крови - не единственный механизм ингибирования активности пируватдегидрогеназы в миокарде при СД [30, 31]. Другими словами, снижение активности пируватдегидрогеназы при СД определяется не только ускоренным окислением жирных кислот в кардиомиоцитах, но и непосредственным ингибированием фермента [32, 33]. Параллельно с ингибированием активности пируватдегидрогеназы при СД падает скорость окисления углеводов, что подтверждено исследованиями in vitro [25, 32-34] и in vivo [21, 35]. Кроме того, отмечается значительное угнетение гликолиза. Окисление СЖК приводит к накоплению в клетке лимонной кислоты. Именно повышенная концентрация лимонной кислоты, выявляемая у подопытных животных с СД [25], отрицательно влияет на активность фосфофруктокиназы и, таким образом, приводит к угнетению у них гликолиза [33, 34]. Прогрессирующему подавлению процессов гликолиза и окслительного фосфорилирования глюкозы способствует и нарушение транспорта глюкозы в миокардиоцит при СД [36-39]. Установлено, что нарушения транспорта глюкозы при СД обусловлены снижением концентрации в миокарде белков-переносчиков GLUT-1 и GLUT-4, а также снижением содержания в кардиомиоцитах соответствующей им м-РНК [10, 40-43]. Угнетение гликолиза проявляется внутриклеточным избыточным накоплением глюкозо-6-фосфата и снижением соотношения фруктоза-1,6- бифосфат/фруктоза-6-фосфат [25, 39]. Подавление гликолиза серьезно снижает резервные возможности миокарда. Последствия подавления гликолиза Известно, что энергетическая эффективность гликолиза в 18 раз меньше, чем эффективность окислительного фосфорилирования. Однако современный подход к проблемам обеспечения жизнеспособности клетки придает большое значение не столько общему содержанию АТФ в клетке, сколько сохранности тех запасов АТФ, которые располагаются в непосредственной близости от зависимых от них метаболических насосов. Для целого ряда процессов, которые прямо или косвенно регулируют уровень кальция в цитоплазме, предпочтительным источником АТФ является гликолиз [44]. Весьма скромная доля АТФ, образующаяся в процессе гликолиза, является незаменимым источником энергии для мембранного транспорта Са и, в частности для Са-АТФазы ионного насоса саркоплазматического ретикулума [45]. Замечено, что подавление гликолиза приводит к постоянному, выраженному переизбытку кальция внутри клетки [46]. При этом саркоплазматический ретикулум оказывается неспособным поглощать кальций с нормальной скоростью [47]. Накопление кальция вызывает опасные последствия. Во-первых, провоцируется миокардиальная контрактура. Гликолитическая фракция АТФ используется в реакциях сопряжения электрофизиологических и контрактильных процессов миокарда [48]. Именно поэтому возникновение выраженных нарушений в системе гликолиза ведет к нарушению расслабления миокарда и возникновению ригидности сердечной мышцы [45]. Ухудшение кровотока, индуцируемое контрактурой, на фоне активизации кислородозатратных типов обмена, свойственных СД, может привести к необратимому повреждению миокарда. Во-вторых, избыток митохондриального кальция провоцирует дефицит АТФ. Один из защитных механизмов, препятствующих накоплению кальция в цитоплазме, заключается в захвате избыточных ионов кальция митохондриями. При этом во внутримитохондриальное пространство поступают положительные заряды. Чтобы уравновесить эти изменения в заряде, митохондрии должны активно выкачивать протоны, усиленно потребляя необходимую для этого АТФ. Это приводит уменьшению пула АТФ, который может быть использован для обеспечения сокращений миокардиоцитов. В- третьих, при избытке кальция активируются некоторые фосфолипазы, способствуя тем самым разрушению клеточных мембран и приводя к накоплению вредных поверхностно активных лизолейцинов [49]. Избыток кальция способствует возникновению аритмий. Примером таких аритмий могут служить ишемические или реперфузионные желудочковые тахикардии. Гликолитически вырабатываемая АТФ требуется также для нормального функционирования адренергических нейронов миокарда [50]. Особую значимость сохранность процесса гликолиза приобретает в условиях ишемии. Именно повышением гликолитической продукции АТФ зачастую объясняют благотворный эффект глюкозы на функцию сердца в условиях аноксии и экспериментальной ишемии миокарда [51, 52]. Факторы, способствующие вхождению глюкозы в процесс гликолиза, уменьшают ишемическое повреждение миокарда, в то время как факторы, препятствующие включению глюкозы в гликолитический цикл, увеличивают степень ишемического поражения [53]. Блокирование гликолиза ведет к необратимым повреждениям клеток [44]. Эти данные однозначно свидетельствуют об уникальной роли гликолитической фракции АТФ в сохранении функции и структуры кардиомиоцита. Все вышеописанные последствия подавления окислительного фосфорилирования глюкозы и процесса гликолиза при СД возникают в результате усиленного транспорта жирных кислот в митохондрии и накопления продуктов их -окисления. В настоящее время не вызывает сомнения, что эти процессы тесно связаны с нарушением синтеза жирных кислот в цитозоле диабетического миокарда. Одно из наиболее ярких проявлений этих нарушений - выраженное накопление триглицеридов в миокарде больных СД. При СД наряду с повышением концентрации жирных кислот в крови резко возрастает содержание в миокарде триглицеридов [54, 55]. Прирост содержания триглицеридов в миокарде коррелирует с высокой концентрацией СЖК в крови [55, 56] и повышенным уровнем КоА в кардиомиоцитах [57]. Хотя скорость липолиза триглицеридов в кардиомиоцитах диабетического миокарда значительно повышена [58], накопление триглицеридов свидетельствует о сопутствующей интенсификации процессов липогенеза. Основным ферментом, связанным с нарушением синтеза жирных кислот в цитозоле миокарда при СД, является ацетил-КоА-карбоксилаза. Под воздействием этого фермента в цитозоле клетки из ацетил-КоА образуется малонил-КоА. Последний является промежуточным продуктом в процессах синтеза жирных кислот. Накопленные к настоящему времени данные позволяют рассматривать ацетил-КоА-карбоксилазу в качестве не только регулятора процесса синтеза жирных кислот, но основного регулятора окисления жирных кислот в миокарде. Это регулирующее действие реализуется через малонил-КоА. Малонил-КоА является мощным ингибитором ключевого фермента мембранного транспорта жирных кислот - карнитинпальмитоилтрансферазы-I [59]. При СД активность ацетил-КоА-карбоксилазы в кардиомиоцитах существенно снижена [59- 67]. Это снижение активности фермента в миокарде сохраняется даже в присутствии высоких концентраций ацетил-КоА. В результате снижения активности ацетил-КоА- карбоксилазы в клетке падает содержание малонил-КоА. Нарушение процесса образования в миокарде малонил-КоА при СД [59-67] закономерно приводит к активации карнитинпальмитоилтрансферазы-I и усиливает поступление в митохондрии жирных кислот. Последствия снижения активности ацетил-КоА-карбоксилазы не ограничиваются ускорением транспорта активированных длинноцепочных жирных кислот в митохондрии. При СД в цитоплазме накапливается ацетил-КоА. С одной стороны, это связано с тем, что активация -окисления приводит к избытку ацетил-КоА в митохондриях и он по карнитиновому "челночному механизму" ацетилтранслокации начинает поступать обратно в цитозоль [61, 64, 65]. С другой стороны, в связи со снижением активности ацетил-КоА-карбоксилазы он не используется в процессах синтеза жирных кислот и, таким образом, его накопление происходит особенно интенсивно. Это может индуцировать ряд весьма важных нарушений в обмене жирных кислот как в митохондриях, так и в цитоплазме. Накопившийся в цитозоле ацетил-КоА может вновь поступать в митохондрии, так как для этого процесса не требуется наличие свободного карнитина. Вследствие своего более быстрого -окисления [68, 69] ацетил-КоА может вытеснять из процесса -окисления одновременно поступающие длинноцепочные ацил- КоА и способствовать накоплению последних внутри митохондрий. В цитоплазме накопившийся ацетил-КоА способствует повышению концентрации ацетилкарнитина, что снижает уровень карнитина. Вследствие этого уменьшается возможность для ацил-КоА вступать в соединение с карнитином и подвергаться дальнейшему транспорту в митохондрии [70]. В результате, несмотря на то, что количество ацил-КоА в цитозоле значительно увеличено, их доля, которая может быть перенесена в митохондрии, относительно уменьшается. В связи с этим увеличивается доля ацил-КоА, которые могут быть включены в триглицериды. Усиленное накопление длинноцепочных жирных кислот и их метаболитов в цитоплазме способствует активизации этого процесса. Необходимый для синтеза триглицеридово -глицерофосфат присутствует в цитозоле в значительном количестве, так как в условиях СД активность глицероальдегид-3-фосфатдегидрогеназы гликолитического цикла резко падает. Поступление в цитозоль неокисленного ацил-КоА способствует еще большему усилению липогенеза. Синтез триглицеридов в цитоплазме и окисление жирных кислот в митохондриях являются высококислородозатратными процессами. Активизация этих процессов в диабетическом миокарде делает его крайне чувствительным к снабжению кислородом и создает условия к развитию процессов ишемии при самом незначительном снижении коронарного кровотока. Обобщая сказанное, хочется еще раз подчеркнуть, что снижение активности ацетил- КоА-карбоксилазы, характерное для СД, сопровождается не только усилением - окисления жирных кислот в митохондриях и подавлением процессов гликолиза и окислительного фосфорилирования глюкозы, но и вытеснением из процесса -окисления производных длинноцепочных жирных кислот с последующим накоплением их метаболитов как в митохондриях, так и в цитоплазме диабетического миокарда. Победителями в этой борьбе за митохондрии становятся жирные кислоты, причем, по- видимому, среди них лидируют короткоцепочные производные (рис. 2). Последствия подобного рода нарушений обмена жирных кислот хорошо изучены. Накопление в митохондриях недоокисленных активированных форм жирных кислот - ацилкарнитина и ацетил-КоА - подавляет активность митохондриальной адениннуклеотидтранслоказы, участвующей в транспорте АДФ и АТФ, что ведет к нарушению обеспечения энергией процессов, проходящих внутри и вне митохондрий [71-73]. Этот пусковой механизм индуцирует дальнейшее изменение обмена и играет решающую роль в развитии нарушений энергетического метаболизма миокарда [74]. Увеличение содержания СЖК и интермедиатов оказывает детергентподобный эффект на мембраны клеток миокарда [75]. В основе детергентподобного эффекта этих липидов лежит их амфифильная способность взаимодействовать как с гидрофобной (липидной), так и гидрофильной (водной) областями биомембран. Это ведет к механическому разрыву мембран и потере ими барьерной функции. В сердце это сопровождается неконтролируемым увеличением вхождения Са в клетки и их последующей гибелью [76-79]. Накапливающиеся интермедиаты жирных кислот оказывают деструктивный эффект на митохондрии, угнетают активность Na, К-АТФазы и аденилатциклазы сарколеммы [80, 81], подавляют активность Са-насоса саркоплазматического ретикулума и угнетают транспорт электронов за счет ингибирования НАД . Н-КоQ-редуктазы [78, 82]. Нарушение метаболизма жирных кислот миокарда приводит к ряду функциональных нарушений в деятельности сердца. При накоплении продуктов окисления жирных кислот отмечается снижение общей и регионарной сократительной функции [83], нарушение диастолического расслабления, укорачивается мембранный потенциал действия возбужденного миокардиоцита [84]. Подчеркивают, что недоокисленные жирные кислоты и продукты их обмена являются, по-видимому, основными биохимическими медиаторами, вызывающими злокачественные нарушения ритма и развитие внезапной смерти [75, 85]. Основные сведения о неблагоприятном воздействии недоокисленных жирных кислот на деятельность миокарда получены при изучении ишемизированного миокарда. Метаболические последствия ишемии миокарда на уровне миокарда разительно напоминают сдвиги метаболизма, отмечаемые у больных СД даже в условиях адекватного снабжения миокарда кислородом. Это и накопление продуктов обмена жирных кислот, и блокада окислительного фосфорилирования глюкозы, и блокада гликолиза, и накопление в миокарде большого количества триглицеридов. Схожесть настолько очевидна, что нарушения обмена миокарда при СД с большим основанием можно назвать "метаболической" ишемией. Именно поэтому в условиях СД присоединение гемодинамически обусловленной ишемии часто быстро приводит к роковым последствиям. Проблема коррекции миокардиального метаболизма при ишемической болезни сердца особенно актуальна для больных СД. Именно у этих больных блокада -окисления жирных кислот в миокарде представляется наиболее патогенетически обоснованной тактикой, направленной на улучшение функциональных возможностей сердца. Кроме того, такое описанное свойство блокаторов -окисления жирных кислот, как увеличение инсулиновой чувствительности [73], вероятно, весьма полезно в этой ситуации. В настоящее время имеется большое количество исследований, подтверждающих эффективность применения триметазидина, цитопротектора, блокирующего -окисления жирных кислот, при ишемической болезни сердца у больных СД [86-88]. Указанный препарат ингибирует 3-кетоацил-КоА-тиолазу. Этот фермент является последним энзимом в цепи митохондриального -окисления жирных кислот [89]. Под влиянием триметазидина -окисление жирных кислот снижается, растормаживается активность пируватдегидрогеназы и восстанавливается окислительное фосфорилирование глюкозы. В результате функционирование ишемизированного миокарда оптимизируется. В исследованиях, проведенных Ю.А.Федоткиной и соавт., добавление к антиангинальной терапии 60 мг триметазидина в сутки у больных СД со стабильной стенокардией улучшало показатели теста с физической нагрузкой более выраженно, чем у лиц без СД [90, 91]. Схожие результаты при применении триметазидина у больных СД получены в исследовании TRIMPOL-1 [92], в котором 4-недельная терапия 60 мг/сут триметазидина у больных СД с ишемической болезнью сердца приводила к достоверному увеличению толерантности к физической нагрузке, повышению показателей, характеризующих ишемический порог сердца и снижению приема нитратов [93]. Одним из последних исследований является "ТРИУМФ", оценивающий эффективность триметазидина МВ при лечении 846 больных стабильной стенокардией в 10 регионах Российской Федерации [93]. Положительный эффект триметазидина у больных СД вполне объясним. Однако раскрытие всех свойств подобной терапии у больных СД требует дальнейших целенаправленных исследований.
×

About the authors

A. A Aleksandrov

References

  1. Bradley R.F, Bryfogle J.W. Am J Med 1956; 30: 207-6.
  2. Kesler I. Am J Med 1971; 51: 715-24.
  3. Partamian J.O, Bradley R.F. N EngI J МегА 1965; 273: 455.
  4. Rytter B, Troelsen S, Beck Nielsen Н. Diabetes Care 1985; 8: 230-4.
  5. Ulvenstam G, Aberg А, Bergstrand R et al. Diabetes 1985; 34: 787-92.
  6. Каппе W.B, Mc Gee D.L. Am Med Assoc 1979; 241: 2035-8.
  7. Шабалин А.В., Никитин Ю.Н. Кардиология. 1999; 3:
  8. Stone P.H, Muller J.E, Hartwell Т et al. Am Coll Cardiol 1989; 14: 49-57.
  9. Opie L. The heart. Philadelphia, Lippncott-Raven, 1998.
  10. Stanley W.C, Lopaschuk G.D, Mc Cormack J.G. Cardiovasc Res
  11. Balaban R.S, Kantor H.L, Katz L.A, Briggs R.W. Science 1986;
  12. Camici P, Ferrannini Е, Opie L.H. Prog Cardiovasc Dis 1989; 32: 217-38.
  13. Liedtke A.J. Prog Cordi ovasc Dis 1981; 23: 321.
  14. Opie I.Н. Am Heorr J 1968; 76: 685-9.
  15. Stanley W.C, Lopaschuk G.D, Mc Cormack J.G. Cardiovasc Res 1997; 33: 243-57.
  16. Taegtmeyer Н. Curr Prob Cordiol 1994; 19: 59-113.
  17. Garland P.B, Randle P.J, Newsholm E.A. Biochem J 1964;
  18. Neely J.R, Rovetto M.J, Oram J.F. Prog Cardiovask Dis 1972;
  19. Pincus G. Progress in hormone research. New York, 1966.
  20. Lopaschuk G.D. Coron Artery Dis 1996; 7: 116-23.
  21. Hail J.L, Stanley W.C, Lopaschuk G.D et al. Am 1 Physio 1996; 271: Н2320-Н9.
  22. Glatz J.F.C, van Breda Е, Keizer Н.А et al. Biochem Biophys Res Commun 1994; 199: 639-46.
  23. Chen Y, Ianuzzo D, Fong B.C, Spitzer J.J. Metabolism 1984; 33: 1078-84.
  24. Mokhtar N, Lavoie J-P, Rousseau-Migneron S, Nadeau А. Diabetes 1993; 42: 686-7.
  25. Chen, Ianuzzo C.D, Fong В.С, Spitzer J.J. 1984; 33: 1078-84.
  26. Randle P.J, Priesman D.A. Short term аl 4 longer term regulation of pyruvate dehydrogenase kinase. In: Patel M.S, Roche Т.Е, Harris R.A, eds. Alpha-Keto Acid Dehydrogenase Complexes. Basel: Birkhauser VerIag, 1996; P. 151-61.
  27. Randle P.J, Hales C.N, Garland P.B, Newsholme Е.А. Lancet 1963; 1: 785-9.
  28. Wieland О, Funcke H., Loftier G. 1971; 15: 295-8.
  29. Wieland О, Siess Е, Schulze Wethmar F.H, Funcke H.G, Winton В. Arch Btoc/tern Biophys 1971; 143: 593-601.
  30. Wall S.R, Lopaschuk G.D. Biochim Btophys Acta 1989; 1006: 97-103.
  31. Mc Garry J.D, Leatherman G.F, Foster D.W. 1 Biol С 1978; 253: 4128-36.
  32. Chatham J.C, Forder J. 1 Mol Cell Cordial 1993; 25: 1203-13.
  33. Gamble J, Lopaschuk G.D. Biochim Biophys Acro 1994; 1225: 191-9.
  34. Wall S.R, Lopaschuk G.D. Glucose oxidation rates fatty acid - perfused isolated working hearts from diabetic rat. Biochim Biophys Acta 1989; 1006: 97-103.
  35. Avogaro А, Nosadini R, Попа А et al. Ат./ Physio/ 1990; 258: Е606-Е618.
  36. Barrett E.J, Schwartz R.G, Francis С.К, Zaret B.L. J Clin Invest 1984; 74: 1073-9.
  37. Garland P.B, Randle P.J. Biochem 1 1964; 93: 678-87.
  38. Morgan Н.Е, Cadenas Е, Regan D.M. J Biol 1961; 236: 262-8.
  39. Newsholme Е.А, Randle P.J. Biochem 1 1964; 93: 641-51.
  40. Camps M.A, Castello P, Munoz М et al. Biochem J 1992; 282: 765-72.
  41. Garvey W.T, Hardin D, Juhaszova М, Dominguez J.H. Ат J Physiol 1993; 264: Н837-Н844.
  42. Hall L., Sexton W, Stanley W.C. App Physiol 1995; 78: 76-81.
  43. Stanley W.C, Hall L., Smith K.R et al. Metabolism 1994; 43: 61-9.
  44. Owen P, Dennis S, Opie L.H. Circ Res 1990; 66: 344-54.
  45. Меерсон Ф.З. Патогенез и предупреждение стрессорных и ишемических повреждений сердца. М.: Медицина, 1984; 269 с.
  46. Jeremy R.W, Korestune Y, Marban E, Becker L.C. Circ Res 1992; 70: 1180-90.
  47. Opie L.H. Cardiovasc Res 1992; 26: 721-33.
  48. Cowan J.C, Williams E.M. J Mol Cell Cardial 1980; 12: 347-69.
  49. Higgens T.J, Baibey P.J, Allsopp D. J Mol Cell Cardiol 1982; 14: 645-54.
  50. Abrahamson T, Almgren O, Carlson L. J Mol Cell Cardiol 1983; 15: 821-30.
  51. Hearse D.J, Chain E.B. Biochem J 1972; 128: 1125-33.
  52. Markov A.K, Oglethirpe N.C, Blake T.M et al. Am Heart J 1980; 100: 639-40.
  53. Opie L.H. Circ Res 1976; 38 (suppl. 1): 1-52-1-74.
  54. Denton R.M, Randle P.J. Btochem J 1967; 104: 416-22.
  55. Rizza R.A, Crass M.F, Shipp J.C. Metabolism 1974; 20: 539-543. Lopaschuk G.D, Tsang Н. Circ Res 1987; 61: 853-8.
  56. Murthy, Shipp J.C. Diabetes 1977; 26: 222-9.
  57. Saddik М, Lopaschuk G.D. Can J Physio Pftarmacol 1994; 72: 1110-9.
  58. Mc Garry J.D, Leatherman G.F, Foster D.W. JBiol С 1978; 253: 4128-36.
  59. Мс Оиту J.D, Mills S.E, Long C.S, Foster D.W. Biochem J 1983; 214: 21-8.
  60. Lopaschuk G.D, Belke D.D, Gamble J et al. Biochim Biophys Acta 1994; 1213: 263-76.
  61. Lopaschuk G.D, Witters L.A, Itoi Т et al. 1994; 269: 25871-8.
  62. Kudo N, Gillespie J.G, Kung L et al. Biochim Biophys Acta 1996; 1301: 67-75.
  63. Hardie D.G. Biochim Biophys Acta 1992; 1123: 231-8.
  64. Lopaschuk G.D, Gamble J. Can У Physiol Pharmacol 1994; 72: 1101-9.
  65. Saddik М, Gamble J, Witters L.A, Lopaschuk G.D. J Biol Chem 1993; 268: 25836-45.
  66. Kudo N, Barr A.J, Barr R.L et al.J Biol Chem 1995; 270: 17513-20.
  67. Awan M.M, Saggerson E.D. Biochem J 1993; 295: 61-6.
  68. Бакшите Л.И. Автореф. дисс. … канд. биол. наук. Вильнюс, 1981; 20 с.
  69. Stanley A.W, Moraski R.E, Russell R.O et al. Am J Cardiol 1975; 36 (7): 929-37.
  70. Neely J.R, Morgan H.E. Ann Rev Physiol 1974; 36: 413-59.
  71. Вавилин В.А. Автореф. дис. … канд. мед. наук. Томск, 1983; 19 с.
  72. Pauson D.J, Shug A.L. J Moll Cell Cardiol 1983;. 15 (suppl. 3): 15-23.
  73. Кальвиньш И.Я. Милдронат - механизм действия и перспективы его применения. Рига: ПАО "Гриндекс", 2002.
  74. Srago E. Life Sci 1978; 22: 1-6.
  75. Clansen J, Peleby M, Jorgensen P et al. Lancet 1966; 2: 919-24.
  76. Corr P.B, Gross P.W, Sobel B.E. Circulation Res 1984; 55: 135-54.
  77. Katz A.M. J Moll Cell Cardiol 1982; 14: 627-32.
  78. Van der Vusse B.J, Reneman R.S. Moll Cell Cardiol 1984; 16: 677-82.
  79. Victor T, La Cock C, Lochntr A. Moll Cell Cardiol 1984; 16: 709-21.
  80. Abe M, Yamazaki N, Suzuki Y. et al. J Moll Cell Cardiol 1984; 16: 239-45.
  81. Owens K, Kennett F.F, Weglicki W.B. Am J Physiol 1982; 142: 456-61.
  82. Van Jaarsveld H, Lochner A. Basic Res Cardiol 1982; 77: 388-403.
  83. Liedtke A.J, Nellis S, Neely J.R. Circulat Res 1978; 43 (4): 652-61.
  84. Kowan J.S, Vaughan W.E.M. J Moll Cell Cardiol 1980; 12 (3): 347-69.
  85. Russell D.C, Oliver M.F. J Moll Cell Cardiol 1979; 11 (1): 31-44.
  86. Dalla-Volta S, Maraglino G, Dalla Valentina P et al. Cardiovasc Druds Ther 1990; 4: 853-60.
  87. Detry J, Sellier P et al. Br J Clin Pharmacol 1994; 37: 279-88.
  88. Michaelides A.P, Spiropoulos K, Dimopopoulos K et al. Clin Drug Invest 1997; 13: 8-14.
  89. ТРИУМФ, триметазидин МВ в лечении больных стабильной стенокардией: уникальная метаболическая эффективность. М., 2002.

Supplementary files

Supplementary Files
Action
1. JATS XML

Copyright (c) 2003 Consilium Medicum

Creative Commons License
This work is licensed under a Creative Commons Attribution-NonCommercial-ShareAlike 4.0 International License.

СМИ зарегистрировано Федеральной службой по надзору в сфере связи, информационных технологий и массовых коммуникаций (Роскомнадзор).
Регистрационный номер и дата принятия решения о регистрации СМИ: серия ПИ № ФС77-63969 от 18.12.2015. 
СМИ зарегистрировано Федеральной службой по надзору в сфере связи, информационных технологий и массовых коммуникаций (Роскомнадзор).
Регистрационный номер и дата принятия решения о регистрации СМИ: серия
ЭЛ № ФС 77 - 69134 от  24.03.2017.

This website uses cookies

You consent to our cookies if you continue to use our website.

About Cookies