Practical approaches to improving the efficiency of suppression of resistant gram-negative flora


Cite item

Full Text

Abstract

The spread of resistant gram-negative microflora leads to a limited selection of antimicrobial drugs, an increase in the duration of treatment and increased mortality. In the absence of new antibacterial agents active against polyresistant strains, it is important to obtain maximum benefit from existing antibacterial agents that can be achieved by optimizing their pharmacological parameters. In addition, the need to expand the experimental and clinical studies to facilitate the study of the conditions of the development of resistance of microbes in the course of treatment with antibiotics, detailing the impact of other factors allows to overcome this process and optimize antibiotic therapy.

Full Text

Р аспространение полирезистентных Pseudomo- nas aeruginosa, Acinetobacter spp., Escherichia coli, Klebsiella spp. приводит к ограничению выбора антибактериальных препаратов, росту продолжитель- ности лечения и летальности [1-5]. Актуальность про- блемы потребовала более глубокого изучения и прак- тического внедрения принципов рационального при- менения антибиотиков: ориентированности на кон- кретные группы пациентов, внедрения системы рационального использования антибиотиков в лечебно- профилактических учреждениях [6-8]. Эти меры су- щественно улучшили выбор антибактериальных пре- паратов, однако не привели к снижению или распро- странению резистентности [9]. Стагнация разработки новых антибиотиков, в том числе с оригинальным ме- ханизмом действия, потребовала оптимизации при- менения уже существующих. Одним их перспектив- ных направлений является оптимизация применения антибиотиков с учетом особенностей фармакокине- тики/фармакодинамики (ФК/ФД). Основные принципы ФК/ФД Эти принципы призваны гармонизировать микробиологические, фармакологические и патофизиологи- ческие свойства антибиотиков и человека для дости- жения максимального киллинга возбудителей в очаге инфекции [10, 11]. Определенные ФК/ФД-показатели (пиковая концентрация, продолжительность поддер- жания концентрации антибиотика в крови, площадь под ФК-кривой) сопрягаются с активностью антибио- тика in vitro (минимальная подавляющая концентра- ция - МПК). В результате можно с высокой степенью вероятности прогнозировать динамику подавления живых микробов в крови. Учет ФК/ФД антибиотиков позволяет оптимизировать дозу и кратность введения, получить наиболее высокий клинический и микробио- логический результат [11]. Наиболее изученными в практическом плане пара- метрами ФК/ФД являются: отношение пиковой кон- центрации к МПК (Cmax/МПК); период времени, когда концентрация в крови превышает МПК возбудителя к интервалу введения препарата (%T>МПК); отношение площади под кривой «концентрация/время» в течение 24 ч к МПК (AUC/МПК или AUIC). AUC является наибо- лее важным показателем для большинства антибиоти- ков, имеющих линейную ФК, пропорциональную дозе, что позволяет легко оптимизировать режим антибак- териальной терапии (АБТ). Пиковая концентрация и концентрация во времени независимо влияют на пока- затель AUC. При постоянных ФК-параметрах (пиковая концентрация, величина абсорбции, время) только один показатель остается переменным - величина клиренса. Снижение клиренса препарата приводит к пропорциональному возрастанию его концентрации, следовательно, увеличению AUC (AUC/МПК). Имеются особенности ФК/ФД разных классов анти- биотиков, которые оказывают влияние на бактериаль- ный киллинг. Антибиотики, у которых при повышении концентрации усиливается киллинг, называются «кон- центрационно зависимые» (аминогликозиды, фторхи- нолоны, даптомицин), и показатели Cmax/МПК или AUC/МПК прямо коррелируют с их активностью [12-14]. Антибиотики, которые достигают максималь- ного бактериального киллинга при низких концентра- циях (в пределах клинических дозировок), но завися- щие от времени сохранения такой концентрации, на- зываются «концентрационно независимые», или «вре- мязависимые». Активность киллинга b-лактамов, в том числе карбапенемов, линезолида и тигециклина, уве- личивается в зависимости от продолжительности пер- систенции концентрации препарата, превышающей МПК конкретного микроба (%T>МПК) [15, 16]. Селекция резистентности бактерий связана с кон- центрацией антимикробного препарата [17]. Предпо- лагается, что при определенных концентрациях анти- биотика возникает «селекционное окно», способ- ствующее формированию резистентных штаммов. Эти представления трансформировались в понятие «кон- центрации препарата, предотвращающей появление мутантов (КППМ)», которая является самой низкой концентрацией антибиотика, способной подавлять рост пошаговой мутации. Следовательно, «селекцион- ное окно» определяется концентрацией между КППМ и МПК наиболее чувствительной субпопуляции микро- бов [18]. Резистентность к антибиотикам Резистентность возбудителей инфекций у человека рассматривается Всемирной организацией здраво- охранения в качестве третьей по важности глобальной проблемы [19]. С целью преодоления резистентности грамположительной флоры (резистентные к метицил- лину Staphylococcus aureus и резистентные к ванкоми- цину энтерококки) были разработаны линезолид, дап- томицин, тигециклин и цефтаролин [20, 21]. Тигецик- лин и цефтаролин являются препаратами широкого спектра, активными также против грамотрицательных возбудителей. Однако проблема разработки антибио- тиков с новым механизмом действия или узкого спек- тра специально против резистентных грамотрица- тельных микробов остается очень актуальной. В отсут- ствие таких новых антибиотиков требуется получать максимальный эффект от имеющихся, что может быть достигнуто с помощью оптимизации параметров их ФК/ФД (пиперациллин/тазобактам, цефепим, меропе- нем, дорипенем). b-Лактамы Резистентность к b-лактамам описана вскоре после внедрения в клиническую практику пенициллина, за- тем эта же проблема возникла относительно цефа- лоспоринов и других b-лактамов [22, 23]. Применение b-лактамов стало значительно более проблемным после распространения b-лактамаз расширенного спектра действия, обнаруженных у энтеробактерий, Pseudomonas spp. и Acinetobacter spp. [24, 25]. Большое количество исследований in vitro и in vivo подтвердило, что %T>МПК является важнейшим ФД-по- казателем для оценки киллинга b-лактамами. Для обес- печения бактериостатического эффекта пенициллина и цефалоспоринов показатель %T>МПК должен состав- лять 30 и 50%, для бактерицидного - 35-40% и 60-70% соответственно [10, 15, 26, 27]. Величина %T>МПК, кото- рая будет обеспечивать уровень профилактики рези- стентности для грамотрицательных бактерий, в настоя- щее время неизвестна. В экспериментальных условиях рост резистентности P. aeruginosa обнаруживали при %T>МПК<50%. До получения новых данных принято предложение о необходимости применения дозы, ко- торая создает концентрацию в 4 раза выше МПК и обес- печивает максимальную продолжительность поддер- жания уровня, достаточного для подавления резистент- ной субпопуляции микробов [28, 29]. Бактериостатический и бактерицидный уровни могут быть недостаточными для лечения тяжелых ин- фекций [30, 31]. Недавно получены ретроспективные клинические данные у пациентов в критическом со- стоянии, указывающие на достижение более высоко- го и продолжительного уровня антибиотиков в крови по сравнению с экспериментальными показателями [28, 32]. У пациентов, получавших цефалоспорины по поводу тяжелых инфекций с достижением показателя %T>МПК=100%, имелся более высокий клинический и бактериологический результат лечения, чем у паци- ентов с %T>МПК<100%. Поэтому концентрация выше МПК в течение 90-100% дозирования с помощью по- стоянной или продленной инфузии антибиотика позволяет быть уверенным в достижении хотя бы ми- нимальных целевых показателей ФК/ФД [28, 33, 34]. Другим подходом является сохранение суточной до- зировки, но деление ее на меньшие части и более ча- стое введение этих частей для достижения целевых по- казателей %T>МПК, однако он менее удобен и еще ме- нее изучен. Целевые показатели превышения МПК при частом введении низких доз препарата могут быть не- достижимы из-за быстрого выведения b-лактамов. Оп- тимизация ФК/ФД-показателей особенно важна при лечении пациентов в критическом состоянии с не- предсказуемой ФК, инфекциями, вызванными возбуди- телями с повышенными МПК, или резистентной по- пуляцией микробов. Имеются клинические данные, свидетельствующие о неблагоприятных результатах, если целевые показатели ФК/ФД не достигались при инфекциях, вызванных возбудителями с высокими МПК: 28-суточная летальность пациентов с бактерие- мией, вызванной грамотрицательными возбудителями при МПК цефепима 8 мкг/мл и выше и менее 8 мкг/мл, составили, соответственно, 54,8 и 24,1% [35]. Обнару- жено увеличение 30-суточной летальности при лече- нии бактериемии, вызванной P. aeruginosa препаратом пиперациллин/тазобактам при повышении МПК до 32-64 мкг/мл [36]. Постоянная инфузия Несмотря на наличие экспериментальных данных о преимуществе постоянной инфузии перед дискрет- ной, в клинических исследованиях не получено досто- верных подтверждений влияния на исход [37]. Иссле- дования были очень разными по дизайну, гетероген- ности популяции, характеру инфекций, методам оценки результатов лечения и небольшими по выбор- кам [34]. В самое крупное исследование по сравнению постоянной инфузии и традиционного введения пи- перациллина/тазобактама были включены 167 паци- ентов [38]. Клиническая эффективность при посто- янной инфузии составила 86,4%, при традиционном введении - 88,4%. Метаанализ и последующие иссле- дования подтвердили отсутствие различий в эффек- тивности лечения при постоянной инфузии и обыч- ном дозировании [39-41]. Продленная инфузия Продленная инфузия обеспечивается продолжительным, но прерывистым введением антибиотиков. Это позволяет повысить %T>МПК, избежать проблем посто- янной инфузии, касающихся длительной стабильности препарата в растворе, его контаминации и токсично- сти [32, 34]. Проведено 2 клинических исследования, которые доказали преимущество продолжительной ин- фузии пиперациллина/тазобактама (4-часовые) по сравнению с более коротким введением препарата (30 мин): достоверное снижение летальности обнару- жено в группе с продленной инфузией в первом (9,2 и 12,2%) и во втором (17,9 и 31,6%) исследовании [32, 42]. Достоверное снижение продолжительности госпита- лизации было обнаружено в одноцентровом когорт- ном исследовании реанимационных пациентов [32]. В ретроспективном исследовании с историческим контролем не было обнаружено различий в 30-дневной летальности среди пациентов, получавших продлен- ную инфузию пиперациллина/тазобактама или обыч- ное введение [43]. Опубликовано несколько клиниче- ских наблюдений успешного применения продолжи- тельной инфузии пиперациллина/тазобактама [44, 45]. Карбапенемы С середины 1980-х годов карбапенемы рассматриваются в качестве важнейших препаратов для лечения инфекций, вызванных резистентной грамотрицатель- ной флорой. К настоящему времени наблюдается тре- вожная тенденция роста резистентности возбудителей к карбапенемам, приводящая к снижению их эффек- тивности и повышению летальности [46, 47]. Активность карбапенемов определяется структурой b-лактамного кольца, является времязависимой и оце- нивается показателем %T>МПК, причем не связанной с белками части препарата. В ранних исследованиях бы- ло показано, что бактериостатический уровень дости- гается при %T>МПК=20%, а максимальный бактерицид- ный - при 40% [10, 49, 50]. Относительно низкий пока- затель T>МПК карбапенемов по сравнению с другими b-лактамами связан с более высокой природной актив- ностью и выраженностью постантибиотического эф- фекта. Оптимизация ФД-показателей карбапенемов возможна таким же образом, как и других b-лактамов: с помощью повышения целевого показателя %T>МПК при продолжительной или постоянной инфузии. Постоянная инфузия карбапенемов Имеются исследования, подтверждающие равную эффективность постоянной инфузии и обычного введе- ния карбапенемов в экспериментальных и клиниче- ских условиях [51, 52]. Изучены значения ФK/ФД при постоянном и обычном введении высоких и низких доз меропенема. При использовании симуляции «Монте- Карло» (метод популяционного ФК-моделирования) до- казана вероятность достижения целевых показателей с помощью постоянной инфузии и высокой дозы против aeruginosa и не получено различий в эффективности этих режимов в отношении Klebsiella pneumonia и Ente- robacter cloacae. Потенциал применения постоянной инфузии не совсем понятен, так как относительно бы- строе разрушение препарата в растворе (после 3 ч) тре- бует частой замены вводимого препарата или исполь- зования специальных охлаждающих устройств. С по- мощью симуляции «Монте-Карло» было выявлено, что целевые показатели против грамотрицательных возбу- дителей достигались при назначении меропенема по 500 мг через 6 ч и 1 г - через 8 ч. ФК-характеристики здоровых добровольцев при этих режимах введения оказались равными [53, 54]. В нескольких клинических исследованиях тех же доз меропенема не было выявле- но статистических различий в госпитальной летально- сти, клинической эффективности, продолжительности лечения и госпитализации [55, 56]. Несмотря на теоре- тическое преимущество, до настоящего времени не по- лучено достоверных данных о достижении адекватных значений %T>МПК у пациентов в критическом состоя- нии с вариабельными показателями ФК или при лече- нии инфекций, вызванных возбудителями с повышен- ными показателями МПК. Проведено сравнение продленной (3-4 ч) и обыч- ной (30 мин) инфузии меропенема и дорипенема в модели у животных. В популяционной ФК-модели бы- ли использованы данные пациентов с абдоминальны- ми инфекциями, внебольничной пневмонией, пнев- монией, связанной с искусственной вентиляцией лег- ких (ИВЛ) [58]. Меропенем вводили в дозе 0,5, 1 и 2 г в течение 30 мин или 3 ч через 8 ч для достижения кон- центрации 4 мкг/мл, которая представляет стандарт- ную точку отсечения чувствительных штаммов Ente- robacteriaceae, Acinetobacter spp. и P. aeruginosa. Веро- ятность достижения показателя %T>МПК на уровне 40% (минимальная бактерицидная концентрация) по- вышалась с 64 до 90%, если продолжительность инфу- зии увеличивали с 30 мин до 3 ч при введении 1 г пре- парата. Более высокая вероятность достигалась при симуляции введения 2 г меропенема через 8 ч в виде 3-часовой инфузии против Acinetobacter spp. и P. aeru- ginosa. В сравнительном популяционном ФК-исследо- вании показано, что меропенем по 1 г через 8 ч в виде 3-часовой инфузии достигает более высоких показа- телей против P. aeruginosa, чем меропенем 0,5 г или имипенем/циластатин по 0,5 г через 6 ч в виде 1-часо- вой инфузии [59]. У 9 пациентов с нозокомиальной пневмонией, связанной с ИВЛ (НПивл), и 8 пациентов с фебрильной нейтропенией и бактериемией приме- няли 1 г в течение 10 мин, 1 или 2 г в виде 3-часовой инфузии: при МПК 4 мкг/мл показатель %T>MIC=40% был достигнут, соответственно, у 57, 73 и 86% пациен- тов с НПивл и 75,7, 99,24 и 99,96% пациентов с ней- тропенической лихорадкой [60]. Дорипенем по ФД близок меропенему, однако показа- тели МПК актуальной грамотрицательной флоры при- мерно в 2 раза ниже, т.е. активность - выше. Дорипенем с меньшей вероятностью гидролизуется карбапенема- зами и более стабилен в растворе при комнатной тем- пературе [61-63]. В 0,9% растворе хлористого натрия меропенем стабилен в течение 1 ч, дорипенем - 4 ч. В 5% растворе глюкозы меропенем стабилен 4 ч, а дори- пенем - 12 ч [64, 65]. Эта стабильность определяет возможность введения препарата в виде продолжительной инфузии. При симуляции «Монте-Карло» 4-6-часовой инфузии получено повышение вероятности достиже- ния показателя %T>MIC=35% даже при высоком уровне МПК возбудителей [66]. В небольших популяционных исследованиях были получены сходные результаты [67-69]. Эти данные послужили основой для проведе- ния сравнительного клинического исследования у 531 пациента с НПивл продленной инфузии дорипене- ма в дозе 500 мг через 8 ч в виде 4-часовой инфузии и обычного введения имипенема [70]. Дорипенем оказал- ся не хуже имипенема по клинической эффективности у всей исследованной популяции (68,3 и 64,2%) и у по- лучивших препарат хотя бы 1 раз (59,0 и 57,8%). Отмечено достижение более высокой клинической эф- фективности в группах с более высокой оценкой по шкале APACHE II и у лиц старшего возраста. Необходи- мо уточнить, что в отношении лечения инфекций, вы- званных P. аeruginosa, клиническая эффективность до- рипенема хотя и была выше (80%) имипенема/циласта- тина (43%), однако являлась недостоверной из-за не- большого количества наблюдений. Профилактика роста резистентности флоры Несмотря на установленную зависимость между показателями ФД и результатами лечения, постоянные или продленные инфузии b-лактамов и карбапенемов на практике применяются редко. Определенные несо- ответствия результатов экспериментальных и клини- ческих исследований можно объяснить различием ди- зайна, недостатком проспективных клинических дан- ных и отсутствием стимулов к изменению привычных методов дозирования времязависимых антибиотиков. С момента первых описаний влияния ФК на бактери- цидную активность пенициллина в 1950-е годы одним из наиболее значимых достижений клинической фар- макологии было подтверждение роли ФК/ФД и воз- можности оптимизации эрадикации бактерий [71]. Су- щественно увеличилось количество исследований, подтверждающих возможность профилактики рези- стентности при достижении целевых ФК/ФД-показа- телей. Однако значительная часть данных касается ис- следования грамположительных микробов и примене- ния других групп препаратов, в основном фторхино- лонов [72]. Существенно меньше данных относительно применения ФК/ФД-принципов для профилактики ре- зистентности грамотрицательной флоры к b-лактамам и карбапенемам [73]. Вероятно, показатели ФК/ФД, способствующие подавлению резистентности, могут отличаться от тех, которые определяют эрадикацию бактерий [74]. В одном из экспериментальных исследо- ваний было показано, что доза меропенема опреде- ляется соотношением минимальной остаточной кон- центрации/МПК, и показатель менее 6,2 приводит к се- лекции резистентных мутантов P. aeruginosa in vitro [75]. Требуются новые клинические данные, подтвер- ждающие возможность подавления селекции рези- стентности и повышения МПК при достижении опре- деленных целевых ФД-значений [28, 35, 36]. Очень сложной задачей является одновременная оценка ком- плекса факторов, например индивидуальной вариа- бельности ФК, выбор генотипических и фенотипиче- ских показателей для выявления селекции резистент- ности или параметров ФК/ФД, которые коррелируют с ФД-результатом. До тех пор, пока не будет достигнут прогресс в экспериментальных и клинических иссле- дованиях, клиницисты будут вынуждены довольство- ваться только экспериментальными доказательствами эрадикации бактерий. До настоящего времени не проведены клинические исследования, которые были бы посвящены изучению возможности профилактики резистентности вообще и грамотрицательных микробов в частности. Исключением является одно из представленных ранее клинических исследований, где вторичной задачей была оценка безопасности и эффективности продол- женной инфузии дорипенема и имипенема у пациен- тов с НПивл. Анализ подгрупп показал, что только 18% (5 из 28) штаммов P. aeruginosa стали резистентными (МПК 8 мкг/мл) к концу лечения дорипенемом в отли- чие от 64% (16 из 25) штаммов у получавших имипе- нем. Предполагается, что это связано с оптимизацией целевых параметров ФК/ФД при инфузии дорипенема [70]. Эти данные требуют дополнительного подтвер- ждения крупными клиническими исследованиями у различных популяций пациентов с разными инфек- циями. Необходимо обнаружить те параметры ФК/ФД, которые могут быть связаны с развитием резистент- ности. Кроме данных ФК/ФД, актуально оценить не- обходимость комбинации антибиотиков, продолжи- тельность АБТ и некоторые другие проблемы, оказы- вающие влияние на выбор стратегии применения ан- тибиотиков. Важнейшей проблемой в изучении антибиотиков яв- ляется сложность создания близкого к реальным кли- ническим условиям дизайна исследования, причем ос- новным препятствием являются индивидуальные раз- личия ФК, которые очень сложно предвидеть. Измене- ния объема распределения и почечного клиренса мо- гут приводить к невозможности достижения целевых показателей ФК/ФД. Например, быстрая волемическая нагрузка при лечении септического шока будет сни- жать пиковую концентрацию и способствовать более быстрому снижению концентрации антибиотика в крови по сравнению с его применением вне шока [30, 76, 77]. Снижение почечного клиренса антибиотиков при почечной недостаточности способствует в боль- шей степени оптимизации применения концентра- ционно зависимых препаратов по сравнению с время- зависимыми. Однако эти сложные клинические сцена- рии требуют сбалансированного подхода во избежа- ние проявлений токсичности препаратов. Объем рас- пределения вносит дополнительные проблемы в веро- ятность достижения активным антибиотиком очага инфекции. Показатели ФК, полученные на основании изучения сывороточной концентрации антибиотика, могут не отражать показатели соотношения концент- рация-время в очаге (легкие, костная ткань, централь- ная нервная система, кожа и др.). Максимальная кон- центрация, пенетрация в ткани и выделение из них мо- гут существенно отличаться от показателей, получен- ных в результате оценки соотношения концентра- ция-время в крови [78, 79]. Дополнительную слож- ность в оценку ФК/ФД вносит опосредованное влия- ние таких условий, как степень связывания с белками и ее вариабельность, поскольку считается, что ФД-актив- ностью обладает только несвязанная фракция препа- рата [80]. С другой стороны, имеется успешный клини- ческий опыт применения препаратов с очень высокой степенью связывания с белками (более 90%), что указы- вает на еще более сложные взаимодействия, которые пока недостаточно изучены. Целью применения антибиотиков при инфекциях яв- ляется быстрое достижение и поддержание показате- лей ФК/ФД, обеспечивающих эрадикацию бактерий (целевые показатели) и нормальную работу иммунной системы. Быстрое их достижение способствует уко- рочению продолжительности клинических проявле- ний и снижает вероятность получения концентраций антибиотика, способствующих селекции резистентных мутантов [81]. Продолжительность применения анти- биотиков также способствует селекции резистентно- сти грамотрицательных возбудителей. Поэтому сокра- щение продолжительности лечения до минимально достаточной для эрадикации бактерий способствует снижению селекционного давления. Практическое внедрение этих принципов приведет к снижению по- требления антибиотиков и изменению чувствительно- сти микробов [82, 83]. Своевременность отмены анти- биотиков всегда требует взвешенной оценки достаточ- ной и минимально возможной продолжительности. В одном из проспективных исследований было показа- но, что у пациентов с НПивл появление полирезистент- ных P. aeruginosa наблюдалось после 6 сут АБТ [84]. Заключение Антибиотики в отличие от других лекарственных препаратов не связываются с определенными рецепто- рами организма человека. Более того, организм паци- ента является средой для доставки антибиотиков в очаг инфекции, достижения возбудителей, пенетрации внутрь и подавления их жизнедеятельности. Отсут- ствие прямой зависимости между активностью анти- биотика in vitro и эффективностью in vivo привело к поиску более сложных методов оптимизации приме- нения b-лактамов. Даже такие уникальные антибиоти- ки, как карбапенемы, в зависимости от степени дости- жения целевых ФК/ФД-показателей способны про- являть бактериостатический или бактерицидный эф- фект, что необходимо учитывать при разработке и внедрении в клиническую практику новых принципов дозирования у разных категорий пациентов. В усло- виях нарастания резистентности микробов и отсут- ствия новых антибиотиков необходимо расширять экспериментальные и клинические исследования, спо- собствующие изучению условий формирования рези- стентности микробов в процессе лечения антибиоти- ками, уточнить влияние множества других факторов, позволяющих преодолевать этот процесс, и оптимизи- ровать АБТ.
×

About the authors

V. B Beloborodov

Email: vb_beloborodov@mail.ru

References

  1. Ho J, Tambyah P.A, Paterson D.L. Multiresistant Gramnegative infections: a global perspective. Curr Opin Infect Dis 2010; 23: 546-53.
  2. Qureshi Z.A, Paterson D.L, Peleg A.Y et al. Clinical characteristics of bacteraemia caused by extendedspectrum blactamaseproducing Enterobacteriaceae in the era of CTXMtype and KPCtype b - lactamases. Clin Microbiol Infect 2012; 18: 887-93.
  3. Gudiol C, Calatayud L, Garcia-Vidal C et al. Bacteraemia due to extendedspectrumbetalactamaseproducing Escherichia coli (ESBL- EC) in cancer patients: clinical features, risk factors, molecular epidemiology and outcome. J Antimicrob Chemother 2010; 65: 333-41.
  4. Tam V.H, Rogers C.A, Chang K.T et al. Impact of multidrugresistant Pseudomonas aeruginosa bacteremia on patient outcomes. Antimicrob Agents Chemother 2010; 54: 3717-22.
  5. Mauldin P.D, Salgado C.D, Hansen I.S et al. Attributable hospital cost and length of stay associated with health careassociated infections caused by antibioticresistantgramnegative bacteria. Antimicrob Agents Chemother 2010; 54: 109-15.
  6. Tamma P.D, Cosgrove S.E. Antimicrobial stewardship. Infect Dis Clin North Am 2011; 25: 245-60.
  7. Nowak M.A, Nelson R.E, Breidenbach J.L et al. Clinical and economic outcomes of a prospective antimicrobial stewardship program. Am J Health Syst Pharm 2012; 69: 1500-8.
  8. Абакумов М.М., Багдасарова Е.А., Багненко С.Ф. и др. Стратегия и тактика применения антимикробных средств в лечебных учреждениях России. Российские национальные рекомендации. Под ред. В.С.Савельева, Б.Р.Гельфанда, С.В.Яковлева. М.: Компания Боргес, 2012.
  9. Slain D, Sarwari A.R, Petros K.O et al. Impact of a Multimodal Antimicrobial Stewardship Program on Pseudomonas aeruginosa Susceptibility and Antimicrobial Use in the ICU Setting. Crit Care Res Pract 2011: 416426.
  10. Craig W.A. Pharmacokinetic/pharmacodynamic parameters: rationale for antibacterial dosing of mice and men. Clin Infect Dis 1998; 26: 1-10.
  11. Drusano G.L. Pharmacokinetics and pharmacodynamics of antimicrobials. Clin Infect Dis 2007; 45: S89-95.
  12. Moore R.D, Lietman P.S, Smith C.R. Clinical response to aminoglycoside therapy: importance of the ratio of peak concentration to minimal inhibitory concentration. J Infect Dis 1987; 155: 93-9.
  13. Forrest A, Nix D.E, Ballow C.H et al. Pharmacodynamics of intravenous ciprofloxacin in seriously ill patients. Antimicrob Agents Chemother 1993; 37: 1073-81.
  14. Fenton C, Keating G.M, Curran M.P. Daptomycin. Drugs 2004; 64: 445-55.
  15. Craig W.A. Interrelationship between pharmacokinetics and pharmacodynamics in determining dosage regimens for broad - spectrum cephalosporins. Diagn Microbiol Infect Dis 1995; 22: 89-96.
  16. Hatano K, Wakai Y, Watanabe Y, Mine Y. Simulation of human plasma levels of betalactams in mice by multiple dosing and the relationship between the therapeutic efficacy and pharmacodynamic parameters. Chemotherapy1994; 40: 1-7.
  17. Negri M.C, Morosini M.I, Loza E, Baquero F. In vitro selective antibiotic concentrations of betalactams for penicillinresistant Streptococcus pneumoniae populations. Antimicrob Agents Chemother 1994; 38: 122-5.
  18. Drlica K. The mutant selection window and antimicrobial resistance. J Antimicrob Chemother 2003; 52: 11-7.
  19. Hawkey P.M, Jones A.M. The changing epidemiology of resistance. J Antimicrob Chemother 2009; 64 (Suppl. 1): i3-10.
  20. Welte T, Pletz M.W. Antimicrobial treatment of nosocomial meticillinresistant Staphylococcus aureus (MRSA) pneumonia: current and future options. Int J Antimicrob Agents 2010; 36: 391-400.
  21. Saravolatz L.D, Stein G.E, Johnson L.B. Ceftaroline: a novel cephalosporin with activity against methicillinresistant Staphylococcus aureus. Clin Infect Dis 2011; 52: 1156-63.
  22. Eagle H. The multiple mechanisms of penicillin resistance. J Bacteriol 1954; 68: 610-6.
  23. Arias C.A, Murray B.E. Antibioticresistant bugs in the 21st century - A clinical superchallenge. N Engl J Med 2009; 360: 439-43.
  24. Rossi F, Baquero F, Hsueh P.R et al. In vitro susceptibilities of aerobic and facultatively anaerobic Gramnegative bacilli isolated from patients with intra abdominal infections worldwide: 2004 results from SMART Study. J Antimicrob Chemother 2006; 58: 205-10.
  25. Dowzicky M.J, Park C.H. Update on antimicrobial susceptibility rates among gramnegative and grampositive organisms in the United States: results from the Tigecycline Evaluation and Surveillance Trial (TEST) 2005 to 2007. Clin Ther 2008; 30: 2040-50.
  26. Mouton J.W, den Hollander J.G. Killing of Pseudomonas aeruginosa during continuous and intermittent infusion of ceftazidime in an in vitro pharmacokinetic model. Antimicrob Agents Chemother 1994; 38: 931-6.
  27. Mouton J.W, Punt N, Vinks A.A. Concentrationeffect relationship of ceftazidime explains why the time above the MIC is 40 percent for a static effect in vivo. Antimicrob Agents Chemother 2007; 51: 3449-51.
  28. Lodise T.P.Jr, Lomaestro B, Drusano G.L. Piperacillintazobactam for Pseudomonas aeruginosa infection: clinical implications of an extendedinfusion dosing strategy. Clin Infect Dis 2007; 44: 357-63.
  29. Scaglione F, Paraboni L. Pharmacokinetics/pharmacodynamics of antibacterials in the Intensive Care Unit: setting appropriate dosing regimens. Int J Antimicrob Agents 2008; 32: 294-301.
  30. Adembri C, Novelli A. Pharmacokinetic and pharmacodynamic parameters of antimicrobials: potential for providing dosing regimens that are less vulnerable to resistance. Clin Pharmacokinet 2009; 48: 517-28.
  31. Mc Kinnon P.S, Paladino J.A, Schentag J.J. Evaluation of area under the inhibitory curve (AUIC) and time above the minimum inhibitory concentration (T>MIC) as predictors of outcome for cefepime and ceftazidime in serious bacterial infections. Int J Antimicrob Agents 2008; 31: 345-51.
  32. Sinnollareddy M.G, Roberts M.S, Lipman J, Roberts J.A. b - Lactam pharmacokinetics and pharmacodynamics in critically ill patients and strategies for dose optimization: a structured review. Clin Exp Pharmacol Physiol 2012; 39: 489-96.
  33. Abdul Aziz M.H, Dulhunty J.M, Bellomo R et al. Continuous beta - lactam infusion in critically ill patients: the clinical evidence. Ann Intensive Care 2012; 2: 37.
  34. Bhat S.V, Peleg A.Y, Lodise T.P et al. Failure of current cefepime breakpoints to predict clinical outcomes of bacteremia caused by gram - negative organisms. Antimicrob Agents Chemother 2007; 51: 4390-5.
  35. Tam V.H, Gamez E.A, Weston J.S et al. Outcomes of bacteremia due to Pseudomonas aeruginosa with reduced susceptibility to piperacillintazobactam: implications on the appropriateness of the resistance breakpoint. Clin Infect Dis 2008; 46: 862-7.
  36. Alou L, Aguilar L, Sevillano D et al. Is there a pharmacodynamic need for the use of continuous versus intermittent infusion with ceftazidime against Pseudomonas aeruginosa? An in vitro pharmacodynamic model. J Antimicrob Chemother 2005; 55: 209-13.
  37. Gerber A.U, Craig W.A, Brugger H.P et al. Impact of dosing intervals on activity of gentamicin and ticarcillin against Pseudomonas aeruginosa in granulocytopenic mice. J Infect Dis 1983; 147: 910-7.
  38. Lau W.K, Mercer D, Itani K.M et al. Randomized, openlabel, comparative study of piperacillintazobactam administered by continuous infusion versus intermittent infusion for treatment of hospitalized patients with complicated intraabdominal infection. Antimicrob Agents Chemother 2006; 50: 3556-61.
  39. Roberts J.A, Webb S, Paterson D et al. A systematic review on clinical benefits of continuous administration of betalactam antibiotics. Crit Care Med 2009; 37: 2071-8.
  40. Kasiakou S.K, Sermaides G.J, Michalopoulos A et al. Continuous versus intermittent intravenous administration of antibiotics: a metaanalysis of randomised controlled trials. Lancet Infect Dis 2005; 5: 581-9.
  41. Tamma P.D, Putcha N, Suh Y.D et al. Does prolonged blactam infusions improve clinical outcomes compared to intermittent infusions? A metaanalysis and systematic review of randomized, controlled trials. BMC Infect Dis 2011; 11: 181.
  42. Yost R.J, Cappelletty D.M. RECEIPT Study group. The Retrospective Cohort of Extended Infusion PiperacillinTazobactam (RECEIPT) study: amulticenter study. Pharmacotherapy 2011; 31: 767-75.
  43. Patel G.W, Patel N, Lat A et al. Outcomes of extended infusion piperacillin/tazobactam for documented Gramnegative infections. Diagn Microbiol Infect Dis 2009; 64: 236-40.
  44. Xamplas R.C, Itokazu G.S, Glowacki R.C et al. Implementation of an extendedinfusion piperacillintazobactam program at an urban teaching hospital. Am J Health Syst Pharm 2010; 67: 622-8.
  45. Nichols K.R, Knoderer C.A, Cox E.G, Kays M.B. Systemwide implementation of the use of an extendedinfusion piperacillin/tazobactam dosing strategy: feasibility of utilization from a children’s hospital perspective. Clin Ther 2012; 34: 1459-65.
  46. Nordmann P, Picazo J.J, Mutters R et al. Comparative activity of carbapenem testing: the COMPACT study. J Antimicrob Chemother 2011; 66: 1070-8.
  47. Bratu S, Landman D, Haag R et al. Rapid spread of carbapenem - resistant Klebsiella pneumoniae in New York City: a new threat to our antibiotic armamentarium. Arch Intern Med 2005; 165: 1430-5.
  48. Mena A, Plasencia V, Garcia L et al. Characterization of a large outbreak by CTXM1producing Klebsiella pneumoniae and mechanisms leading to in vivo carbapenem resistance development. J Clin Microbiol 2006; 44: 2831-7.
  49. Hidron A.I, Edwards J.R, Patel J et al. Annual summary of data reported to the National Healthcare Safety Network at the Centers for Disease Control and Prevention, 2006-2007. Infect Control Hosp Epidemiol 2008; 29: 996-1011.
  50. Rhomberg P.R, Jones R.N. Summary trends for the Meropenem Yearly Susceptibility Test Information Collection Program: a 10year experience in the United States (1999-2008). Diagn Microbiol Infect Dis 2009; 65: 414-26.
  51. Craig W.A. The pharmacology of meropenem, a new carbapenem antibiotic. Clin Infect Dis 1997; 24: S266-75.
  52. Ong C.T, Tessier P.R, Li C et al. Comparative in vivo efficacy of meropenem, imipenem, and cefepime against Pseudomonas aeruginosa expressing MexA-MexB-OprM efflux pumps. Diagn Microbiol Infect Dis 2007; 57: 153-61.
  53. Roberts J.A, Kirkpatrick C.M, Roberts M.S et al. Meropenem dosing in critically ill patients with sepsis and without renal dysfunction: intermittent bolus versus continuous administration? Monte Carlo dosing simulations and subcutaneous tissue distribution. J Antimicrob Chemother 2009; 64: 142-50.
  54. Lorente L, Lorenzo L, Martin M.M et al. Meropenem by continuous versus intermittent infusion in ventilatorassociated pneumonia due to gramnegative bacilli. Ann Pharmacother 2006; 40: 219-23.
  55. Krueger W.A, Bulitta J, Kinzig-Schippers M et al. Evaluation by montecarlo simulation of the pharmacokinetics of two doses of meropenem administered intermittently or as a continuous infusion in healthy volunteers. Antimicrob Agents Chemother 2005; 49: 1881-9.
  56. Mattoes H.M, Kuti J.L, Drusano G.L, Nicolau D.P. Optimizing antimicrobial pharmacodynamics: dosage strategies for meropenem. Clin Ther 2004; 26: 1187-98.
  57. Kotapati S, Nicolau D.P, Nightingale C.H, Kuti J.L. Clinical and economic benefits of a meropenem dosage strategy based on pharmacodynamic concepts. Am J Health Syst Pharm 2004; 61: 1264-70.
  58. Kuti J.L, Florea N.R, Nightingale C.H, Nicolau D.P. Pharmacodynamics of meropenem and imipenem against Enterobacteriaceae, Acinetobacter baumannii, and Pseudomonas aeruginosa. Pharmacotherapy 2004; 24: 8-15.
  59. Ariano R.E, Nyhlacen A, Donnelly J.P et al. Pharmacokinetics and pharmacodynamics of meropenem in febrile neutropenic patients with bacteremia. Ann Pharmacother 2005; 39: 32-8.
  60. Arnold H.M, Mc Kinnon P.S, Augustin K.M et al. Assessment of an alternative meropenem dosing strategy compared with imipenem - cilastatin or traditional meropenem dosing after cefepime failure or intolerance in adults with neutropenic fever. Pharmacotherapy 2009; 29: 914-23.
  61. Patel G.W, Duquaine S.M, Mc Kinnon P.S. Clinical outcomes and cost minimization with an alternative dosing regimen for meropenem in a community hospital. Pharmacotherapy 2007; 27: 1637-43.
  62. Li C, Kuti J.L, Nightingale C.H, Nicolau D.P. Population pharmacokinetic analysis and dosing regimen optimization of meropenem in adult patients. J Clin Pharmacol 2006; 46: 1171-8.
  63. Lomaestro B.M, Drusano G.L. Pharmacodynamic evaluation of extending the administration time of meropenem using a Monte Carlo simulation. Antimicrob Agents Chemother 2005; 49: 461-3.
  64. Jaruratanasirikul S, Sriwiriyajan S, Punyo J. Comparison of the pharmacodynamics of meropenem in patients with ventilatorassociated pneumonia following administration by 3hour infusion or bolus injection. Antimicrob Agents Chemother 2005; 49: 1337-9.
  65. Keam S.J. Doripenem: a review of its use in the treatment of bacterial infections. Drugs 2008; 68: 2021-57.
  66. Mandell L. Doripenem: a new carbapenem in the treatment of nosocomial infection. Clin Infect Dis 2009; 49: S1-3.
  67. Queenan A.M, Shang W, Flamm R, Bush K. Hydrolysis and inhibition profiles of betalactamases from molecular classes A to D with doripenem, imipenem, and meropenem. Antimicrob Agents Chemother 2010; 54: 565-9.
  68. Psathas P.A, Kuzmission A, Ikeda K, Yasuo S. Stability of doripenem in vitro in representative infusion solutions and infusion bags. Clin Ther 2008; 30: 2075-87.
  69. Bhavnani S.M, Hammel J.P, Cirincione B.B et al. Use of pharmacokineticpharmacodynamic target attainment analyses to support phase 2 and 3 dosing strategies for doripenem. Antimicrob Agents Chemother 2005; 49: 3944-7.
  70. Ikawa K, Morikawa N, Ikeda K et al. Pharmacodynamic assessment of doripenem in peritoneal fluid against Gramnegative organisms: use of population pharmacokinetic modeling and Monte Carlo simulation. Diagn Microbiol Infect Dis 2008; 62: 292-7.
  71. Samtani M.N, Flamm R, Kaniga K, Nandy P. Pharmacokinetic - pharmacodynamicmodelguided doripenem dosing in critically ill patients. Antimicrob Agents Chemother 2010; 54: 2360-4.
  72. Van Wart S.A, Andes D.R, Ambrose P.G, Bhavnani S.M. Pharmacokinetic - pharmacodynamic modeling to support doripenem dose regimen optimization for critically ill patients. Diagn Microbiol Infect Dis 2009; 63: 409-14.
  73. Chastre J, Wunderink R, Prokocimer P et al. Efficacy and safety of intravenous infusion of doripenem versus imipenem in ventilator - associated pneumonia: a multicenter, randomized study. Crit Care Med 2008; 36: 1089-96.
  74. Eagle H, Fleischman R, Musselman A.D. Effect of schedule of administration on the therapeutic efficacy of penicillin; importance of the aggregate time penicillin remains at effectively bactericidal levels. Am J Med 1950; 9: 280-99.
  75. Mouton J.W, Ambrose P.G, Canton R et al. Conserving antibiotics for the future: new ways to use old and new drugs from a pharmacokinetic and pharmacodynamic perspective. Drug Resist Updat 2011; 14: 107-17.
  76. Firsov A.A, Gilbert D, Greer K et al. Comparative pharmacodynamics and antimutant potentials of doripenem and imipenem with ciprofloxacinresistant Pseudomonas aeruginosa in an in vitro model. Antimicrob Agents Chemother 2012; 56: 1223-8.
  77. Tam V.H, Schilling A.N, Neshat S et al. Optimization of meropenem minimum concentration/MIC ratio to suppress in vitro resistance of Pseudomonas aeruginosa. Antimicrob Agents Chemother 2005; 49: 4920-7.
  78. Pea F, Viale P, Furlanut M. Antimicrobial therapy in critically ill patients: a review of pathophysiological conditions responsible for altered disposition and pharmacokinetic variability. Clin Pharmacokinet 2005; 44: 1009-34.
  79. Roberts D.M, Roberts J.A, Roberts M.S et al. Variability of antibiotic concentrations in critically ill patients receiving continuous renal replacement therapy: a multicentre pharmacokinetic study. Crit Care Med 2012; 40: 1523-8.
  80. Patel N, Cardone K, Grabe D.W et al. Use of pharmacokinetic and pharmacodynamic principles to determine optimal administration of daptomycin in patients receiving standardized thriceweekly hemodialysis. Antimicrob Agents Chemother 2011; 55: 1677-83.
  81. Koomanachai P, Bulik C.C, Kuti J.L, Nicolau D.P. Pharmacodynamic modeling of intravenous antibiotics against gramnegative bacteria collected in the United States. Clin Ther 2010; 32: 766-79.
  82. Conte J.E, Golden J.A, Kelley M.G, Zurlinden E. Intrapulmonary pharmacokinetics and pharmacodynamics of meropenem. Int J Antimicrob Agents 2005; 26: 449-56.
  83. Chandorkar G, Huntington J.A, Gotfried M.H et al. Intrapulmonary penetration of ceftolozane/tazobactam and piperacillin/tazobactam in healthy adult subjects. J Antimicrob Chemother 2005; 67: 2463-9.
  84. Zeitlinger M.A, Derendorf H, Mouton J.W et al. Protein binding: do we ever learn? Antimicrob Agents Chemother 2011; 55: 3067-74.
  85. Martinez M.N, Papich M.G, Drusano G.L. Dosing regimen matters: the importance of early intervention and rapid attainment of the pharmacokinetic/pharmacodynamic target. Antimicrob Agents Chemother 2012; 56: 2795-805.

Supplementary files

Supplementary Files
Action
1. JATS XML

Copyright (c) 2014 Consilium Medicum

Creative Commons License
This work is licensed under a Creative Commons Attribution-NonCommercial-ShareAlike 4.0 International License.

СМИ зарегистрировано Федеральной службой по надзору в сфере связи, информационных технологий и массовых коммуникаций (Роскомнадзор).
Регистрационный номер и дата принятия решения о регистрации СМИ: серия ПИ № ФС77-63969 от 18.12.2015. 
СМИ зарегистрировано Федеральной службой по надзору в сфере связи, информационных технологий и массовых коммуникаций (Роскомнадзор).
Регистрационный номер и дата принятия решения о регистрации СМИ: серия
ЭЛ № ФС 77 - 69134 от  24.03.2017.

This website uses cookies

You consent to our cookies if you continue to use our website.

About Cookies